自体肿瘤特异性CTLs对裸鼠人乳腺癌移植瘤的抑瘤作用

论文价格:0元/篇 论文用途:仅供参考 编辑:论文网 点击次数:0
论文字数:**** 论文编号:lw2023122904 日期:2025-12-03 来源:论文网

     作者:杨超, 单保恩 刘运江, 王士杰

【摘要】 目的: 研究乳腺癌患者腋下淋巴结细胞诱导产生的肿瘤特异性CTLs在裸鼠体内对患者自身乳腺癌生长的抑制作用。方法: 在裸鼠胸垫处种植人乳腺癌组织, 建立裸鼠乳腺癌移植瘤模型。以细胞因子联合诱导乳腺癌患者腋窝淋巴结单个核细胞成为DC和肿瘤特异性CTL(sCTL)、 非特异性CTL(nCTL)和异体CTL(vCTL); 将不同CTLs注射到荷瘤裸鼠的肿瘤周围, 观察其对肿瘤生长的抑制作用。结果: 人乳腺癌移植瘤在裸鼠体内的成活率为100%。组织病理学证实移植瘤为乳腺浸润性导管癌。与对照组相比, 荷瘤裸鼠移植瘤的体积在sCTL、 nCTL和vCTL治疗组均明显减小(P&<0.05), sCTL对自体移植瘤的生长抑制作用最强[平均瘤体积(82.70±2.09) mm3], 抑瘤率50.5%, 明显高于nCTL组[(96.15±5.35) mm3, 26.9%]和vCTL组[(96.93±4.51) mm3, 25.7%], (P<0.01); 不同CTL治疗组瘤组织内可见大量淋巴细胞和树突状细胞(DC)浸润。结论: 乳腺癌裸鼠移植瘤模型成功率高, 病理学证实与人乳腺癌特征相符, 且有DC和大量特异性CTL浸润。自体特异性CTL对裸鼠体内自体乳腺癌移植瘤有较强的抑制作用。

【关键词】 乳腺癌; 肿瘤引流区淋巴结细胞; 裸鼠模型; 免疫治疗

  乳腺癌是当今危害妇女健康的主要恶性肿瘤。虽经手术、 化疗、 放疗及内分泌治疗等综合治疗, 但40%患者仍死于肿瘤复发和转移[1]。近年来, 随着肿瘤免疫学的发展, 以树突状细胞(dendritic cell, DC)为基础构建的乳腺癌疫苗成为当今研究的热点。本研究中我们以细胞因子联合诱导培养腋下淋巴结细胞为DC和肿瘤特异性CTL, 观察其对裸鼠乳腺癌移植瘤生长的抑制和杀伤作用。

1 材料和方法

  1.1 材料 选取2005-11/2006-02在我科住院手术的乳腺癌患者10例, 年龄41~67岁, 中位年龄52.9岁, 均为女性, 术前均未行放、 化疗, 术后病理为乳腺浸润性导管癌。手术时无菌摘取腋窝引流区肉眼判断无肿瘤转移的淋巴结2~3枚, 选取其中2例患者的肿瘤组织切成约1.5 cm3, 用于建立裸鼠移植瘤模型。 实验动物: SPF级BALB/c裸鼠(32只, 3~4周龄, 体质量13~15 g, 雌性)购于中国医学科学院动物中心。RMPI1640培养基购自 Promega公司; 胎牛血清购自杭州四季青生物试剂公司; rhGMCSF、 rhIL2、 rhIL4 购自Cytolab公司; 抗CD1a、 CD83、 CD86单克隆抗体(mAb)购自Biolegend公司; 抗CD3 mAb、 抗CD4、 CD8 mAb购自Coulter公司。

  1.2 方法

  1.2.1 DC的诱导培养、 自体肿瘤特异性CTL、 nCTL和vCTL的制备 术中取其中1名乳腺癌患者(A)区域引流淋巴结制成单细胞悬液, 分离贴壁细胞, 用rhGMCSF和rhIL4诱导培养为DC, 并与乳腺癌细胞冻融悬液共培养, 使之负载肿瘤抗原; DC与悬浮淋巴细胞共培养为特异性CTL(specific CTL, sCTL); 未负载肿瘤抗原的DC刺激淋巴细胞产生非特异性CTL(non specific CTL, nCTL), vCTL制备方法同异体CTL(varient CTL, sCTL), 但是用其杀伤另一名患者(B)肿瘤。详细方法参照文献[2]。

  1.2.2 人乳腺癌裸鼠移植瘤模型的建立及处理 将2名患者乳腺癌组织块种植于裸鼠胸垫皮下, 2周后, 移植瘤生长良好, 将裸鼠随机分为4组, 每组8只。(1)肿瘤特异性CTL治疗组: 每只裸鼠每次于肿瘤局部注射自体肿瘤特异性CTLs(5×109/L)0.2 mL; (2)非特异性CTL治疗组: 每只裸鼠每次局部注射非特异性CTLs(5×109/L) 0.2 mL; (3)异体CTL治疗组: 种植另一患者(B)乳腺癌组织, 每只裸鼠每次于肿瘤局部注射患者(A)自体肿瘤特异性CTLs(5×109/L) 0.2 mL; (4)空白对照组: 每只裸鼠于肿瘤局部注射生理盐水0.2 mL。以上各组每5 d肿瘤周围注射1次, 共3次。每5 d用游标卡尺测量记录肿瘤长径(a)、 短径(b), 按体积(V)=πab2/6计算肿瘤体积。30 d脱颈处死裸鼠取出移植瘤标本。肿瘤生长抑制率={[1-(实验组结束时瘤体积-实验组开始时瘤体积) ]/(空白对照组结束时瘤体积-空白对照组开始时瘤体积}×100%。

  1.2.3 移植瘤的组织学观察 将移植瘤取出后制成石蜡切片, 常规HE染色, 显微镜观察肿瘤细胞的形态学和凋亡情况; 免疫组化SP法观察DCs(标志物为CD83)和特异性CTL(标志物为CD3、 CD4、 CD8)浸润情况。

  1.2.4 统计学分析 应用SPSS11.5统计软件进行统计。各组移植瘤体积和抑瘤率用x±s表示; 3种治疗方法是否有明显差异采用General Linear Model中Repeated Measures进行统计; 如有明显差异各组间采用Oneway ANOVA进行统计, 进一步两两比较采用LSD进行统计。P&<0.05有明显统计学意义。2 结果

  2.1 不同CTLs治疗对移植瘤体积的影响 将乳腺癌组织移植到裸鼠体内成活并逐渐生长, 2周后移植瘤体积约为50 mm3。治疗前, sCTL、 nCTL和vCTL组荷瘤小鼠的肿瘤体积与空白对照组移植瘤体积无统计学意义(P &>0.05, 表1)。经sCTL、 nCTL和vCTL治疗后, 肿瘤体积与对照组相比明显缩小, 以sCTL组抑瘤效果最明显(P&<0.01, 表1); 各治疗组体积之间进一步两两比较结果显示, 每次治疗后sCTL组与nCTL组和vCTL组移植瘤体积均有统计学意义(P&<0.01), 而nCTL组与vCTL组移植瘤体积无统计学意义。移植瘤体积生长曲线见图1。表1 经不同CTLs治疗后人乳腺癌裸鼠移植瘤体积变化

  2.2 不同CTLs治疗对荷瘤小鼠抑瘤率比较 经sCTL、 nCTL和vCTL治疗的荷瘤小鼠, 移植瘤生长都受抑制, 随着治疗次数增加和时间延长, 抑瘤率逐渐增加(P&<0.05, 表2), 但各个治疗阶段sCTL组抑瘤率明显高于nCTL组和vCTL组(P&<0.05)。表2 不同CTLs治疗组对荷瘤小鼠抑瘤率的比较

  2.3 移植瘤标本病理学观察 实验结束时, 摘取各组荷瘤小鼠肿瘤组织。肉眼观察肿瘤标本呈圆形或卵圆形, 实性, 表面不光滑, 与周围组织界限较清, 易剥离。所有裸鼠未见体内其余脏器转移灶。肿瘤组织切片经HE染色, 显微镜下可见空白对照组癌细胞大小不一, 排列成巢状或条索状, 间质少, 有散在坏死灶; 胞质丰富, 核大, 核异型性明显, 癌细胞向周围组织浸润, 病理诊断为浸润型导管癌(图2A)。经sCTL、 nCTL和vCTL治疗后, 移植瘤标本均可见瘤组织周围有大量淋巴细胞浸润, 并可见癌组织坏死(图2B)。免疫组化结果显示, 3种CTLs治疗组移植瘤癌组织中均可见CD83+阳性(DC细胞)、 CD3+、 CD8+、 CD4+细胞浸润(图3), 对照组未见阳性细胞。

3 讨论

  肿瘤引流区域淋巴结细胞(TDLNC)在机体肿瘤免疫中具有重要的作用[3]。TDLNC中的特异性CTL虽可被肿瘤抗原刺激而致敏, 但由于缺乏协同激活信号而处于失能状态, 不能有效地发挥其杀伤肿瘤细胞的作用[4, 5]。因此, 如何有效提高TDLNC中T细胞的杀伤活性, 对于控制肿瘤转移、 延长肿瘤患者生存期具有重要意义。非成熟DC是人体内功能最强的抗原提呈细胞, 其摄取、 提呈抗原后, 激活初始CD8+T细胞, 介导抗原特异性细胞毒性T细胞效应[6]。乳腺癌患者体内的DC数量与正常个体相比明显减少, 且功能低下。因此, 目前多采用体外模拟DC的成熟过程, 使其接触肿瘤抗原而致敏, 再将其回输体内, 可相对特异地诱导机体肿瘤特异性免疫应答, 起到治疗作用[7]。

  本研究中我们采用人乳腺癌裸鼠移植瘤模型用不同CTL进行治疗, 所选用的裸鼠为去除胸腺的先天性T细胞免疫缺陷动物, 免疫排斥反应缺失; 人乳腺的肿瘤组织中含有肿瘤生长基质, 将瘤组织种植于裸鼠胸垫部, 此处是乳腺生长部位, 且血运丰富。肿瘤被移植于裸鼠后生长状态良好, 并能保持肿瘤细胞的原有形态和生物学特性[8-10]。种植2周后肿瘤生长良好, 开始进行免疫治疗。结果显示, 在20 d各组肿瘤体积差异不大, 考虑CTL输入裸鼠体内时, 肿瘤细胞正在大量增殖, 淋巴细胞杀伤肿瘤细胞, 抑制肿瘤细胞的生长, 需要大约1周才能出现明显的治疗效果, 随着时间延长各组差异越明显, 在30 d sCTL、 nCTL和vCTL治疗组的肿瘤生长体积均明显小于对照组, 以sCTL组抑瘤效果最明显; 3种CTL治疗组抑瘤率不同, sCTL治疗组与nCTL组和vCTL组抑瘤率都有统计学意义。说明以自身抗原致敏的DCs与TDLNC共培养, 诱导得到的sCTL对自身实体瘤有明显的杀伤作用; 而nCTL对乳腺癌移植瘤亦有一定抑瘤效果, 可能为DC经TNFα诱导成熟后, 使CTL具有一定非特异性杀伤活性, 或TDLNC中含有少量DC并经肿瘤细胞致敏, 从而诱导T细胞增殖, 但数量较少, 并且处于“失能”状态; 自体特异性CTL对异体肿瘤也具有一定抑瘤效果, 可能因为不同乳腺癌细胞存在某些相同肿瘤相关抗原, 从而诱导CTL产生杀伤作用。

  本研究结果表明, 肿瘤抗原特异性CTLs对裸鼠人乳腺癌自体移植瘤有明显的抑瘤作用。

参考文献


[1] Emens LA, Reilly RT, Jaffee EM. Breast cancer vaccines: maximizing cancer treatment by tapping into host immunity[J]. EndocrineRelated Cancer, 2005, 12(1): 1-17.

[2] 刘运江, 张建立, 单保恩. 乳腺癌患者腋窝淋巴结来源的DC体外诱导肿瘤特异性CTL的实验研究[J]. 细胞与分子免疫学杂志, 2007, 23(1): 60-63.

[3] Santi AD. Lymph node matastases: the Important of the Microenvironment[J]. Cancer, 2000, 88(1): 175-179.

[4] Wu H, Rodger JR, Perrard XY, et al. Deficiency of CD11b or CD11d result in reduced staphylococcal enterotoxininduced T cell response and T cell phenotypic changes[J]. J Immunol, 2004, 173(1): 297-306.

[5] Cohen PA, Peng L, Kjaergaard J, et al. Tcell adoptive therapy oftumors: mechanisms of improved therapeutic performance[J]. Crit Rev Immunol, 2001, 21(43): 215-248.

[6] Marzo A, Kinnear B, Lake RA, et al. Tummorspecific CD4(+) T cells have a major PostLicensing role in CTL mediate antitumor immunity[J]. Immunol, 2000, 165(11): 6047-6055.

[7] Heiser A, Coleman D, Dannull J, et al. Autologous dendritic cells transfected withprostatespecific antigen RNA stimulate CTL reponses against metastatic prostatetumors[J]. J Clin Invest, 2002, 109(3): 409-417.

[8] 白绍槐, 赵扬冰, 张旋波, 等. 人乳腺浸润性导管癌裸鼠移植模型的建立[J]. 华西医科大学学报, 1999, 30(2): 220-221.

[9] 甄林林, 武正炎, 范 萍, 等. 人乳腺癌裸鼠移植模型的建立[J]. 南京医科大学学报, 2002, 21(6): 509-510.

[10] Carriere V, Coliddon R, JiguetJiglaire C, et al. Cancer cells regulate lymphocyte recruitment and leukocyte endothelium interactions in the tumordraining lymph node[J]. Cancer Res, 2005, 65(24): 11639-11648.

如果您有论文相关需求,可以通过下面的方式联系我们
客服微信:371975100
QQ 909091757 微信 371975100