作者:严玉兰, 刘洋, 曹文雁, 步雪峰 步志高, 郑金旭
【摘要】 目的: 研究HuIFNλ1和HuIFNλ2真核细胞重组表达及其生物学活性。方法: 用水疱性口炎病毒(VSV)刺激人宫颈癌HeLa细胞, 用RTPCR克隆HuIFNλ1和HuIFNλ2基因, 与PCAGGEGFP真核表达载体连接, 构建重组体PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2并进行鉴定, 后在BHK21细胞进行表达, 采用VSV*GFP于人肺腺癌A549上进行表达产物抗病毒活性测定; 并通过已构建的MDBKMxpLuc细胞系对HuIFNλ1和HuIFNλ2诱导MxA抗病毒蛋白产生的特性进行研究。结果: HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector的SacⅠ、 XhoⅠ和SacⅠ和SalⅠ双酶切鉴定, 均出现610 bp大小的带, 测序示与GenBank上报道的序列完全一致。PCAGGHuIFNλ1活性104 IU/mL, PCAGGHuIFNλ2活性为102 IU/mL, 且PCAGGHuIFNλ1诱导Mx抗病毒蛋白的表达一定时间内随时间延长表达不断增强, 9~12 h达高峰, 24 h后消失(P&<0.05)。结论: 成功构建了PCAGGHuIFNλ1PCAGGHuIFNλ2 的真核表达载体并在BHK21细胞中得到表达, 其抗病毒活性与诱导Mx抗病毒蛋白密切相关。
【关键词】 干扰素λ; 基因转染; 生物活性
[Abstract] AIM: To construct the eukaryotic expressing vector PCAGG HuIFNλ1 and PCAGGHuIFNλ2 and to study the biological activity of HuIFNλ1and HuIFNλ2. METHODS: The cDNA fragment encodding HuIFNλ1 and HuIFNλ2 was amplified from the total RNA extracted from virusinduced HeLa cells by RTPCR. Then it was cloned into the eukaryotic expressing vector PCAGGEGFP. The recombinant was transfected into BHK21 cells. VSV*GFPA549 system was used to measure the antivirus activity.The constructed cell line MDBKMxpLuc was used to study the characteristics of MxA protein induced by the products of PCAGGHuIFNλ1 and PCAGGHuIFNλ2. RESULTS: The recombinant vector HuIFNλ1PMD18T Vector was enzymed by SacⅠand XhoⅠ while HuIFNλ2PMD18T Vector was enzymed by SacⅠ and SalⅠ. The fragments were both 610 bp and they were consistent with nucleotide sequences reported in GenBank. The antivirus activity of protein expressed by PCAGGHuIFNλ1 and PCAGGHuIFNλ2 was 104 IU/mL and 102 IU/mL, respectively. The protein expressed by PCAGGHuIFNλ1 and PCAGGHuIFNλ2 induced the expression of the antivirus protein MxA. The expression of protein MxA induced by PCAGGHuIFNλ1 increased with the passage of time, reaching the peak during 9 to 12 hours and disappearing in 24 hours. CONCLUSION: The eukaryotic expressing vector of PCAGGHuIFNλ1 and PCAGGHuIFNλ2 has been successfully constructed and transiently expressed in BHK21 cells. The antivirus activity of the products is closely correlated with inducing the expression of antivirus protein MxA.
[Keywords]INFλ; gene transfection; bioactivity
[摘 要] 目的: 研究HuIFNλ1和HuIFNλ2真核细胞重组表达及其生物学活性。方法: 用水疱性口炎病毒(VSV)刺激人宫颈癌HeLa细胞, 用RTPCR克隆HuIFNλ1和HuIFNλ2基因, 与PCAGGEGFP真核表达载体连接, 构建重组体PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2并进行鉴定, 后在BHK21细胞进行表达, 采用VSV*GFP于人肺腺癌A549上进行表达产物抗病毒活性测定; 并通过已构建的MDBKMxpLuc细胞系对HuIFNλ1和HuIFNλ2诱导MxA抗病毒蛋白产生的特性进行研究。结果: HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector的SacⅠ、 XhoⅠ和SacⅠ和SalⅠ双酶切鉴定, 均出现610 bp大小的带, 测序示与GenBank上报道的序列完全一致。PCAGGHuIFNλ1活性104 IU/mL, PCAGGHuIFNλ2活性为102 IU/mL, 且PCAGGHuIFNλ1诱导Mx抗病毒蛋白的表达一定时间内随时间延长表达不断增强, 9~12 h达高峰, 24 h后消失(P&<0.05)。结论: 成功构建了PCAGGHuIFNλ1PCAGGHuIFNλ2 的真核表达载体并在BHK21细胞中得到表达, 其抗病毒活性与诱导Mx抗病毒蛋白密切相关。
[关键词]干扰素λ; 基因转染; 生物活性
Kotenko和Sheppard等2003年相继报道一组新型干扰素家族IFNλs, 包括IFNλ1、 IFNλ2和IFNλ3 3个成员(又称IL29、 IL28A 和IL28B)[1, 2]。IFNλs作为干扰素家族中的新成员, 具有与Ⅰ型干扰素类似的信号转导通路和生物学活性, 两者都是通过诱导受体异二聚体化, 但又有其独特的受体表达系统, 从而发挥抗病毒、 抗细胞增殖和免疫调节等生物学作用。IFNλs 的抗病毒活性与I型IFN相似, 但其对靶细胞有选择性[3]。IFNλs 可诱导几种抗病毒蛋白的表达[2], 主要包括: 抗黏液病毒蛋白(MxA)及2’, 5’寡聚腺苷酸合成酶, 前者属于GTP酶类, 特异性作用于某一类病毒的蛋白质, 可阻断某些正黏病毒(如流感病毒)的复制[4]。本研究采用水疱性口炎病毒(vesic stomatovirus, VSV)病毒诱导人宫颈癌HeLa细胞, 经RTPCR技术克隆hIFNλ1、 hIFNλ2基因, 并与PCAGG真核表达质粒进行基因重组, 构建PCAGGhIFNλs真核表达载体, 在BHK21细胞中进行瞬时表达, 采用VSV*GFP于人肺腺癌A549上进行表达产物抗病毒活性检测, 并通过MDBKMxpLuc细胞系对hIFNλ1和hIFNλ2诱导产生MxA抗病毒蛋白特性进行研究。
1 材料和方法
1.1 材料 引物由上海生物工程有限公司合成; 内切酶购自TaKaRa公司; T4 DNA连接酶购自MBI公司; 胶回收和质粒小量提取试剂盒均购自上海华顺试剂公司。质粒中量提取试剂盒购自Qiagen公司; TRIzol总RNA试剂盒、 RTPCR试剂盒、 DMEM培养基和转染试剂Lipofectamin2000购自Invitrogen公司; 胎牛血清购自Gibco公司; 表达绿色荧光蛋白报告基因的重组水疱性口炎病毒VSV *GFP由中国农业科学院哈尔滨研究所构建、 滴定并保存; DH5α感受态细胞、 人肺腺癌A549、 BHK21细胞、 人宫颈癌HeLa细胞为中国农业科学院哈尔滨研究所提供; MDBKMxpLuc细胞系为中国农业科学院哈尔滨研究所人兽共患病研究室建立保藏[5]。
1.2 方法
1.2.1 引物设计 按GenBank报告的IFNλ1和IFNλ2基因全长序列设计引物。IFNλ1上游引入SacⅠ酶切位点和kozak序列, 下游引入XhoⅠ酶切位点; IFNλ2上游引物中引入Sac Ⅰ酶切位点和增强表达的kozak序列, 下游引入SalⅠ酶切位点。根据引物设计原则, 设计上下游引物如下: IFNλ1上游引物: 5′CTGAGCTCGCCACCATGGCTGCAGCTTGGAC3′, 下游引物: 5′GTCTCGAGTCAG GTGGACTCAGGGTG3′; IFNλ2上游引物: 5′AAGAGCTCGCCACCATGAAACTAGACATGACTGGGGACTGCAC3′, 下游引物: 5′TTGTCGACTCAGACACACAGGTCCCCAC3′。
1.2.2 HuIFNλ1和HuIFNλ2基因的RTPCR克隆 用VSV病毒按MOI 1.0感染HeLa细胞12 h后, TRIzol法提取HeLa细胞的总RNA, 以Oligo (dT)为反转录引物用Invitrogen反转录试剂盒反转录成cDNA模板进行PCR, PCR的循环条件: HuIFNλ1 95℃ 热启动预变性5 min, 95℃ 30 s, 62℃ 30 s, 72℃ 50 s , 共30个循环, 72℃延伸10 min; HuIFNλ2 95℃热启动预变性5 min, 95℃ 30 s, 64℃ 30 s, 72℃ 50 s , 共30个循环, 72℃延伸10 min。对扩增产物进行10 g/L琼脂糖电泳分析。
1.2.3 PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2真核表达载体的构建及筛选 HuIFNλ1和HuIFNλ2 cDNA的PCR产物用胶回收试剂盒回收, 用T4 DNA连接酶分别将上述回收的PCR产物与PMD18T Vector连接并转化至感受态大肠杆菌DH5α。挑取阳性克隆扩增后, 提取质粒HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector, 分别用SacⅠ、 XhoⅠ和SacⅠ和SalⅠ双酶切鉴定正确后送出上海生物工程有限公司测序。将测序正确的HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector质粒分别用SacⅠ、 XhoⅠ和SacⅠ和SalⅠ双酶切并用胶回收试剂盒回收, PCAGG载体用SacⅠ、 XhoⅠ酶切处理后胶回收, 将二者用T4 DNA连接酶连接并转化至感受态大肠杆菌DH5α, 挑取阳性克隆, 大量制备用于转染。
1.2.4 BHK21细胞的培养、 转染和实验分组 采用DMEM培养基(100 mL/L胎牛血清)常规培养BHK21细胞, 转染前1 d在6 孔板中接种密度为1×108/L的BHK21细胞。随后按Lipofectamin2000转染说明书, 将PCAGGHuIFNλ1、 PCAGGHuIFNλ2和PCAGG空载体(空白对照组)分别转染至BHK21细胞, 每组3 孔, 3 孔正常的BHK21细胞作为阴性对照组。转染时用无血清培养液, 6 h后换成100 mL/L胎牛血清的DMEM培养液, 转染72 h后收集上清, 无菌保存备用。
1.2.5 HuIFNλ1、 HuIFNλ2抗病毒活性测定 用VSV*GFPA549细胞系统测定HuIFNλ1 、 HuIFNλ2抗病毒活性, 以细胞0.5×104个/孔密度将A549细胞铺于96 孔板, 待细胞贴壁后, 分别加入10~106不同倍数稀释的PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2转染上清, 37℃作用24 h, 并设空白对照和PCAGG空载体对照组。含20 mL/L FBS的DMEM稀释的VSV*GFP 3 000 Pfu/孔感染A549细胞, 1 h后换完全培养液, 24 h倒置荧光显微镜观察结果, 以荧光亮度为对照组50%的最高稀释度为一个病毒抑制单位(IU)。
1.2.6 HuIFNλ1和HuIFNλ2激活Mx启动子的生物学活性检测 细胞细胞克隆MDBKMxpLuc于24 孔板中过夜生长至密度约100%时, 分别加入以含50 mL/L FBS的DMEM 10倍稀释的PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2转染上清样品400 μL, 分别在3、 6、 9、 12、 15、 24 h参照高亮萤光素酶检测系统说明书检测IFN刺激Mxp表达的萤光素酶, 每个时间点都做3个平行孔, 并设未用IFN处理的空白孔和PCAGG空质粒转染上清处理的对照组。
2 结果
2 .1 HuIFNλ1、 HuIFNλ2基因克隆和PCR产物分析 经VSV病毒诱导12 h的人HeLa细胞mRNA用RTPCR扩增。其产物经10 g/L的琼脂糖凝胶电泳, 出现大小约为617 bp, 条带大小与所需克隆的HuIFNλ1、 HuIFNλ2基因大小相一致(图1)。
2.2 HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector的酶切鉴定和测序 将克隆的HuIFNλ1和HuIFNλ2cDNA目的基因与Vector 测序载体重组连接后, 转化至感受态大肠杆菌DH5α, 挑取阳性克隆扩增后, 提取质粒HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector, 分别用SacⅠ、 XhoⅠ和SacⅠ和SalⅠ双酶切鉴定, 均出现610 bp大小的带, 送上海生物工程有限公司测序, 序列与GenBank上报道的序列完全一致(图2)。
2.3 PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2真核表达载体的构建及筛选鉴定 将测序正确的HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector质粒分别用SacⅠ、 XhoⅠ和SacⅠ和SalⅠ酶切处理得到目的片段, PCAGG载体用SacⅠ、 Xho Ⅰ酶切处理, 将酶切下片段与处理的载体重组连接并转化至感受态大肠杆菌DH5α, 挑取阳性克隆扩增后双酶切鉴定, 出现610 bp大小的带(图3)。
2.4 HuIFNλ1、 HuIFNλ2抗病毒活性测定 用VSV*GFPA549 细胞系测定PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2转染上清的抗病毒活性, 以不同倍数稀释的PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2转染上清分别作用A549 细胞, 感染VSV*GFP, 后荧光显微镜观察。结果显示: 未加病毒的阴性对照组没有荧光(A), PCAGG空载体转染BHK21细胞的上清处理的细胞孔和BHK21常规培养细胞的上清处理的细胞孔出现大量荧光, VSV*GFPA549在A549 细胞上大量复制(B, C); PCAGGHuIFNλ1 101~104倍稀释时能抑制病毒复制, 105倍稀释时病毒复制与对照组无差异, 104倍稀释孔荧光亮度约为对照组的一半; PCAGGHuIFNλ2 101~103稀释时能抑制病毒复制, 104~105倍稀释时病毒与对照组无差异, 102倍稀释孔荧光亮度约为对照组一半, 所以PCAGGHuIFNλ1活性104 IU/mL, PCAGGHuIFNλ2活性为102 IU/mL(图4)。
2.5 HuIFNλ1和HuIFNλ2激活Mx启动子的生物学活性检测结果 10倍稀释的PCAGGHuIFNλ1转染上清处理MDBKMxpLuc细胞系, 参照高亮萤光素酶检测试剂(Promega)说明书检测萤光素酶的表达: 3 h可检测到荧光素酶的表达, 9~12 h达高峰, 15 h开始下降, 24 h消失; 10倍稀释的空质粒转染BHK21的对照上清、 BHK21细胞的阴性培养液处理的MDBKMxpLuc细胞系荧光素酶没有表达(P&<0.05); PCAGGHuIFNλ2转染上清处理MDBKMxpLuc细胞系萤光素酶的表达: 9~12 h虽达高峰, 且各时段较阴性对照组高, 但无统计学意义(图5)。
3 讨论
人IFNλs基因位于19号染色体(19q13.13), 与Ⅰ型干扰素的1个外显子相比, IFNλ1基因有5个外显子, IFNλ2和IFNλ3基因含6个外显子。IFNλ1与IFNλ2的氨基酸同源性为81%, 而IFNλ2与IFNλ3的氨基酸同源性为96%。IFNλ1 和IFNλ2可由滤疱性口腔炎病毒(VSV)刺激人宫颈癌HeLa细胞表达[6], 本实验中首先由VSV刺激后HeLa细胞中的RNA, 通过RTPCR进行基因克隆, 并实施HuIFNλ1PMD18T Vector和HuIFNλ2PMD18T Vector的双酶切鉴定和测序, 成功地完成了HuIFNλ1和HuIFNλ2质粒的重组; 上述质粒酶切处理得到目的片段与PCAGG载体重组连接后筛选鉴定, 完成了PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2真核表达载体的构建。
IFNλ1由含22个氨基酸的信号肽和178个氨基酸的成熟肽组成, 具有2个二硫键和1个潜在的N连接的糖基化位点; IFNλ2和IFNλ3则均由含22个氨基酸的信号肽和174个氨基酸的成熟肽组成, 有3个二硫键, 没有糖基化。IFNλ1与IFNλ2在基因序列上及蛋白结构的差异也决定了其抗病毒活性的不同。本实验PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2在BHK21细胞上获得高效的瞬时表达后, 用VSV*GFPA549 细胞系测定PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2转染上清的抗病毒活性, 以不同倍数稀释的PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2转染上清分别作用A549细胞, 感染VSV*GFP, 后荧光显微镜观察。结果显示IFNλ1的活性约为104 IU/mL, 而IFNλ2的活性约102 IU/mL, IFNλ1的活性明显强于IFNλ2, 约为其100倍, 与Zhou等[7]报道的结果相似。
IFNλs诱导抗病毒活性的途径与I型IFN相似, 可通过激活Mx启动子表达MxA抗病毒蛋白和2, 5′OAS(寡腺苷酸合成酶) 而发挥抗病毒作用。鸡Mx启动子序列中的IFN刺激反应元件(interferon stimulated response element, ISRE)与鼠、 人等哺乳动物Mx1或MxA一致, 因此不仅可被鸡的Ⅰ型IFN激活, 而且还对多种哺乳动物Ⅰ型IFN刺激产生转录激活效应[8], IFNλs家族此信号通路与Ⅰ型IFN一致。本实验结果也证明PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2 转染上清处理MDBKMxpLuc细胞系可以检测到报告基因荧光素酶的表达, 进一步研究HuIFNλ1和HuIFNλ2诱导MxA抗病毒蛋白表达的特点, 其特点是HuIFNλ1诱导MxA抗病毒蛋白3 h即可检测到表达, 9~12 h达高峰, 15 h后减退, 24 h消失; HuIFNλ2诱导MxA抗病毒蛋白表达特点为: 能激活, 但较弱。
Ⅰ型干扰素已经用于临床多种疾病(如肿瘤及病毒感染性疾病)的治疗, 但Ⅰ类干扰素的副作用仍不容忽视的, 如病人会出现发热, 食欲不佳, 白细胞减少及血压波动等不良反应, 严重时会引起肾病综合征, 并可继发急性肾功能衰竭, 局部缺血性心脏病、 心肌病等[9]。IFNλs 作为干扰素家族中的新成员, 具有与Ⅰ型干扰素类似的信号转导通路和生物学活性, 目前临床已作为Ⅰ类干扰素的辅助及替代治疗, 且在治疗肝炎方面取得良好的效果[10]。本研究利用体外重组技术构建PCAGGHuIFNλ1和PCAGGHuIFNλ2, 并在BHK21细胞上获得高效的瞬时表达, 在A549细胞上检测到明显的抗病毒活性, 为后续筛选稳定表达的IFNλs细胞株(如肿瘤细胞株), 进而进行基因治疗和基因重组蛋白药物的研究奠定了基础。
参考文献
[1] Kotenko SV, Gallagher G, Baurin VV, et al. IFNλs mediate antiviral protection through a distinct class II cytokine receptor complex[J]. Nat Immunol, 2003, 4(1): 69-77.
[2] Sheppard P, Kindsvogel W, Xu W, et al. IL28, IL29 and their class II cytokine receptor IL28R[J]. Nat Immunol, 2003, 4(1): 63-68.
[3] Meager A, Visvalingam K, Dilger P, et al. Biological activity of interleukins28 and29: comparison with type I interferons[J]. Cytokine, 2005, 31(2): 109-118.
[4] Holzinger D, Jorns C, Stertz S, et al. Induction of MxA gene expression by influenza A virus requires type I or type III interferon signaling[J]. J Virol, 2007, 81(14): 7776-7785.
[5] 陈伟业. 重组牛、 猪和鸡β干扰素在CHO细胞中的高效稳定表达及其生物学活性研究[D]. 南京农业大学, 2007.
[6] Schumacher B, Bernasconi D, Schultz U, et al.The chicken Mx promoter contains an ISRE motif and confers interferon inducibility to a reporter gene in chick and monkey cells[J].Virology, 1994, 203(1): 144-148.
[7] Zhou Z, Hamming OJ, Ank N, et al.Type III interferon (IFN) induces a type I IFNLike response in a restricted subset of cells through signaling pathways Involving both the JakSTAT pathway and the mitogenactivated protein kinases[J]. J Virol, 2007, 81(14): 7749-7758.
[8] Francois C, Bernard I, Castelain S, et al. Quantification of different human alpha interferon subtypes and pegylated interferon activities by measuring MxA promoter activation[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2005, 49(9): 3770-3775.
[9] Teragawa H, Hondo T, Amano H, et al. Adverse effects of interferon on the cardiovascular system in patients with chronic hepatitis C[J]. Jpn Heart J, 1996, 37(6): 905-915.
[10] Shiratori Y, Shiina S, Teratani T, et al. Interferon therapy improves survival in patients with liver cancer and hepatitis C virus infection[J]. Ann Intern Med, 2003, 138(4): 299-306.