作者:林纳, 李 丹, 陈红英, 陈治新, 王小众
【摘要】 目的: 研究HBV X基因与线粒体COXⅢ基因相互作用以及对线粒体功能的影响。 方法: 将HBV X基因真核表达载体pCDNA3X及空载体pCDNA3转染成人肝细胞HL7702细胞, 经过2周G418筛选, 获得稳定表达的新细胞株, 分别命名为HL7702/HBx和H7702/pcDNA3, RTPCR和Western blot方法证实HBV X基因在HL7702/HBx细胞内的稳定表达。抽提细胞总RNA进行半定量RTPCR及分离细胞线粒体进行Western blot检测COX Ⅲ 表达水平变化, 并通过酶动力学方法检测线粒体细胞色素氧化酶活性。结果: 重组质粒pcDNA3X转染后经G418筛选, RTPCR和Western blot分析结果显示HL7702HBx细胞能够稳定表达HBV X基因。RTPCR和Western blot结果发现HBV X基因下调COX Ⅲ 蛋白表达而不影响mRNA水平表达。酶动力学检测发现线粒体细胞色素C氧化酶活性降低。结论: HBV X基因通过转录后水平调节COX Ⅲ表达, HBx通过与COXⅢ相互作用抑制线粒体细胞色素氧化酶活性。
【关键词】 HBx; COX Ⅲ; 线粒体细胞色素氧化酶
[Abstract] AIM: To study the effect of HBx on a new HBxinteracted protein COXⅢ and mitochondria. METHODS: A recombinant eukaryotic expression plasmid pcDNA3X was constructed, then pcDNA3X and pcDNA3 were steadily transfected in HL7702 separately, named HL7702/HBx and HL7702/pcDNA3. The expression of COXⅢ in HL7702/HBx, HL7702/pcDNA3 and HL7702 cells were detected by RTPCR and western blot. Mitochondrial cytochrome c oxidase activities of three groups were assayed spectrophotometrically at 550 nm by using partially purified mitochondria. RESULTS: COXⅢ mRNA expression didn’t change, while protein expression is downregulated in HL7702/HBx. Cytochrome c oxidase activity was much lower in HL7702/HBx compared with HL7702 and HL7702/pcDNA3 cells. CONCLUSION: HBx can downregulate COXⅢ expression through posttranscriptional level and inhibit mitochondrial cytochrome c oxidase activity.
[Keywords]HBx; COXⅢ; cytochrome c oxidase
[摘 要] 目的: 研究HBV X基因与线粒体COXⅢ基因相互作用以及对线粒体功能的影响。 方法: 将HBV X基因真核表达载体pCDNA3X及空载体pCDNA3转染成人肝细胞HL7702细胞, 经过2周G418筛选, 获得稳定表达的新细胞株, 分别命名为HL7702/HBx和H7702/pcDNA3, RTPCR和Western blot方法证实HBV X基因在HL7702/HBx细胞内的稳定表达。抽提细胞总RNA进行半定量RTPCR及分离细胞线粒体进行Western blot检测COX Ⅲ 表达水平变化, 并通过酶动力学方法检测线粒体细胞色素氧化酶活性。结果: 重组质粒pcDNA3X转染后经G418筛选, RTPCR和Western blot分析结果显示HL7702HBx细胞能够稳定表达HBV X基因。RTPCR和Western blot结果发现HBV X基因下调COX Ⅲ 蛋白表达而不影响mRNA水平表达。酶动力学检测发现线粒体细胞色素C氧化酶活性降低。结论: HBV X基因通过转录后水平调节COX Ⅲ表达, HBx通过与COXⅢ相互作用抑制线粒体细胞色素氧化酶活性。
[关键词]HBx; COX Ⅲ; 线粒体细胞色素氧化酶
乙型肝炎病毒(hepatitis B virus, HBV)慢性感染是导致肝细胞癌(hepatocellular carcinoma, HCC)的主要危险因子, HBV X基因全长转录体编码的X蛋白(HBx)含154个氨基酸, 相对分子质量(Mr)约为16 500。X基因及其产物HBx在肝炎病毒慢性感染过程中直接或间接促进HCC的发生、 发展。目前, HBx的亚细胞定位尚存在争议。Henkler等[1]发现X蛋白在低表达的细胞中完全或绝大部分定位于细胞核内, 而过量表达的X蛋白则分布于胞质中。另有学者观察到HBx在细胞质内的水平高于细胞核, 且细胞质中的HBx主要分布于线粒体外膜上[2]。
目前已证实HBx并不直接作用于双链DNA, 主要通过与细胞内多种蛋白质相互作用影响细胞的生物学功能, 故研究体内X结合蛋白对阐明X蛋白的作用及机制有重要作用。我们前期研究已经通过酵母双杂交体系从成人正常肝细胞cDNA文库中筛选出一种新的X结合蛋白细胞色素c氧化酶Ⅲ(cytochrome c oxidase Ⅲ, COXⅢ)[3]。细胞色素c氧化酶复合体是最具特征的呼吸链酶复合体, 由13个亚基组成, COXⅢ在复合酶的聚集和稳定性中起重要作用, 并参与质子的传递和细胞色素c氧化酶介导的能量转换[4]。
我们以成人肝细胞HL7702为研究对象的, 通过构建HBV X基因真核表达载体pcDNA3X, 并将其稳定转染给HL7702细胞, 检测HBx与COXⅢ的相互作用以及由此引起的线粒体结构和功能变化, 进一步阐明HBV的致癌机制。
1 材料和方法
1.1 材料 质粒抽提试剂盒购自深圳生物晶美公司、 pcDNA3表达载体购自Invitrogen公司; 重组HBV X基因真核表达载体pcDNA3X由本实验室保存。成人肝细胞株HL7702购自中科院上海细胞库, DMEM、 F12和胰蛋白酶购自Invitrogen公司。Taq DNA聚合酶购自美国Promega公司; 逆转录试剂盒, JetPEITMGal转染试剂盒购自法国Polyplus transfection公司, TRIzol试剂购自Invitrogen公司; 线粒体抽提试剂盒购自Piecer公司; 线粒体细胞色素氧化酶活性检测试剂盒购自美国Sigma公司。小鼠抗人乙肝病毒X蛋白购自Chemicon公司, 山羊抗人COXⅢ多克隆抗体、 小鼠抗人βactin单克隆抗体(mAb)购自美国Santa Cruz公司, 兔抗小鼠二抗、 马抗山羊二抗购自北京中杉金桥生物技术有限公司, Western blot实验的ECL显色试剂购自北京中杉金桥生物技术有限公司。
1.2 方法
1.2.1 寡核苷酸引物设计 根据HBV X、 GAPDH、 COXⅢ基因序列自行设计引物, 由Invitrogen公司合成。HBV X基因上游引物5′ATGCAAGCTTATGGCTGCTAGGCTGTACTG3′, 下游引物5′TGCGAATTCTTAGGCAGAGGTGAAAAAGTTG3′, 产物467 bp; GAPDH基因上游引物5′ACCACAGTCCATGCCATCAC3′, 下游引物5′ TCCACCACCCTGTTGCTGTA3′, 产物452 bp; COX III基因上游引物: 5′AGCCCATGACCCCTAACA3′, 下游引物5′CCTCATAGTTAGTGGACTCG3′, 产物463 bp。
1.2.2 重组pcDNA3X质粒稳定转染HL7702细胞 HL7702细胞生长于含100 mL/L 胎牛血清的DF (DMEM∶F12=3∶1)培养液中, 采用JetPEITMGal转染试剂盒将质粒pcDNA3和重组真核表达载体pcDNA3X转入HL7702肝细胞株中, 命名为HL7702/pcDNA3、 HL7702/HBx, 步骤如下: 选取对数生长期细胞, 消化接种于25 cm培养瓶, 细胞数为1×106/L, 待细胞贴壁后, 即可进行转染。取2支无菌试管, 分别加入5 μg DNA和16 μL JetPEI, 以250 μL NaCl(150 mmoL/L)稀释, 轻轻涡旋, 将JetPEI加入DNA中, 轻轻混匀, 室温孵育30 min。将细胞内培养液倒去, 加入新鲜培养液及500 μL DNA/JetPEI混合液, 轻轻摇匀, 继续培养48 h。转染结束后将细胞消化移入6孔板, 加入终浓度为800 μg/L G418进行筛选, 2周后分别获得单克隆细胞1株, 命名为HL7702/pcDNA3、 HL7702/HBx。
1.2.3 X基因在转染细胞中的表达 分别抽提HL7702、 HL7702/pcDNA3、 HL7702/HBx 3组细胞总RNA, 逆转录为cDNA。取cDNA 1 μL作为模板, 扩增HBV X基因片段。HBV X基因引物序列如上所述, PCR反应条件为94℃预变性5 min, 94℃变性45 s, 58℃退火30 s, 72℃延伸1 min, 经25个循环。扩增产物在18 g/L琼脂糖凝胶中电泳, 观察结果。
取对数生长期HL7702、 HL7702/pcDNA3、 HL7702/HBx 3组细胞, 4℃预冷PBS洗涤细胞2次, 加入100 μL细胞裂解液(50 mmoL/L的TrisHCl, pH6.8, 100 mmoL/L二硫苏糖醇, 20 g/L十二烷基硫酸纳, 100 g/L甘油), 所得溶液在沸水中煮10 min, 15 000 g离心10 min, 取上清即为细胞总蛋白溶液。测定蛋白浓度, 取50 μg总蛋白上样, 进行120 g/L SDSPAGE电泳, 经硝酸纤维素膜转移, 用含50 g/L脱脂奶粉的TBST溶液(TBS+1 mL/L Tween20)封闭后, 分别与小鼠抗人HBx mAb(1∶100)4℃孵育过夜, 洗涤后再与山羊抗小鼠二抗(1∶2 500)作用1 h, 经ECL底物化学发光显影, 测量胶片中条带灰度值。
1.2.4 COXⅢ基因在转染细胞中的表达变化 分别抽提HL7702、 HL7702/pcDNA3、 HL7702/HBx 3组细胞总RNA, 逆转录为cDNA。取cDNA 1 μL作为模板, 以GAPDH为内参扩增COXⅢ 基因片段。引物序列如上所述, PCR反应条件为94℃预变性5 min, 94℃变性45 s, 58℃退火30 s, 72℃延伸1 min, 经25个循环。扩增产物在18 g/L琼脂糖凝胶中电泳, 观察结果。
分别取对数生长期HL7702、 HL7702/pcDNA3、 HL7702/HBx细胞, 梯度离心法分离线粒体和胞质蛋白。以2×蛋白上样缓冲液稀释线粒体和胞质蛋白, 煮沸变性后进行100 g/L SDSPAGE电泳, 经硝酸纤维素膜转移, 用含50 g/L脱脂奶粉的TBST溶液(TBS+1 mL/L Tween20)封闭后, 分别与山羊抗人COXⅢ 多克隆抗体(1∶100)及小鼠抗人βactin mAb(1∶300)4℃孵育24 h, 洗涤后再分别与马抗山羊二抗(1∶2 000)和山羊抗小鼠二抗(1∶2 500)作用1 h, 经ECL底物化学发光显影, 测量胶片中条带灰度值。
1.2.5 细胞色素C氧化酶(COX)活性在转染细胞中的变化 真核细胞的细胞色素C氧化酶通过与电子耦合为细胞提供能量。细胞色素C氧化酶的底物为细胞色素C, 在酶促反应过程中, 随着底物被氧化, 反应溶液550 nm吸光度呈逐渐下降趋势, 通过检测A550下降速率可反映细胞色素C氧化酶活性。取对数生长期HL7702、 HL7702/pcDNA3、 HL7702/HBx细胞, 消化离心收集细胞约1×107/L, 分离线粒体。将线粒体重悬于1.05 mL氧化酶稀释液中, 加入50 μL 反应底物细胞色素C, 颠倒混匀, 紫外分光光度仪, 550 nm检测反应溶液A550值, 间隔2 s检测1次, 共2 min, 根据A550值变化计算细胞色素C氧化酶活性。
2 结果
2.1 稳定表达HBV X基因HL7702细胞的鉴定 将pcDNA3和pcDNA3X质粒分别转染HL7702细胞, 经过2周G418筛选, 取阳性克隆扩大培养, 命名为HL7702/pcDNA3和HL7702/HBx。RTPCR (图1)和Western blot (图2)结果显示, 仅稳定转染pcDNA3X质粒的HL7702细胞有HBV X基因mRNA和蛋白表达, 而转染pcDNA3质粒的细胞则不表达。成功构建了稳定表达HBV X基因的成人肝细胞HL7702细胞株。
2.2 HBV X基因对HL7702细胞COXⅢ 表达的影响 COX Ⅲ 与GAPDH RTPCR结果如图2所示, 凝胶成像系统扫描灰度值: HL7702组灰度值1.05±0.18; HL7702/pcDNA3组灰度值0.93±0.20; HL7702/HBx组灰度值1.21±0.50。 SPSS12.0统计软件单因素方差分析表明COX Ⅲ 表达的mRNA水平在3组细胞间无统计学意义。 COXⅢ与βactin蛋白电泳结果如图3所示, BandScan软件扫描灰度值: HL7702组 69.65±0.148; HL7702/pcDNA3 组 22.24±0.058; HL7702/HBx组 10.64±3.17。SPSS12.0统计软件单因素方差分析发现在HBx稳定表达的细胞中, COXⅢ 蛋白表达显著下调, 差别有统计学意义(P&<0.05)。
2.3 线粒体细胞色素C氧化酶活性测定 实验结果表明稳定转染HBx的HL7702细胞COX活性明显降低如图所示(图5)。根据公式Unit/mL=△A/min×dil×1.1/线粒体体积×21.84计算COX活性, HL7702组COX活性41.37±3.95 (unit/mL); HL7702/pcDNA3组COX活性32.53±4.80 (unit/mL); HL7702/HBx组COX活性 16.02±7.74 (unit/mL) 。SPSS12.0统计软件单因素方差分析显示HL7702/HBx组COX活性降低(P&<0.05)。图5 3组细胞COX活性测定结果
Fig 5 Cytochrome oxidase activity
3 讨论
HBV慢性感染是导致HCC的主要危险因子, 在HCC发生、 发展过程中起重要作用, 但其具体致癌机制还不十分明确。近几年, 对HBV X基因的研究主要基于两方面, 即转HBV X基因的肝细胞模型及小鼠动物模型的研究, 肝细胞模型多以肝癌细胞株(如HepG2、 QGY7701、 HCC9204等)和肝癌组织为对象。我们以正常成人肝细胞株HL7702为研究对象, 将HBV X基因导入细胞内, 能更准确地模拟HBV慢性感染的生理状态。通过观察、 检测HBV X基因导入后细胞形态和功能变化, 可以更直观反映HBV X基因的生物学功能。本实验成功构建稳定表达HBV X 基因成人肝细胞株, 为后续研究搭建了一个良好的实验平台。
线粒体是特殊的细胞器, 氧化磷酸化等重要的细胞能量代谢都在线粒体内进行, 是细胞能量产生的主要场所。最新的研究发现, HBx可以定位在线粒体上, 结合的区域已经被定位在68~77氨基酸, 这一区域是细胞凋亡必须的, 但是对反式激活作用并不是必须的[1, 5], HBx与线粒体的关系正逐渐成为目前研究的热点。Shirakata 等研究发现HBx和线粒体结合后, 并不直接引起细胞色素C和凋亡诱导因子(AIF)重分布, 但线粒体跨膜电压却降低了, 提示HBx可能干扰了MTP的功能。BclXL能通过稳定线粒体膜抑制HBx的作用, 进一步证实了HBx能作用在线粒体通透性转换孔(MTP), 降低线粒体跨膜电压。HBx还可以和线粒体外膜蛋白VDAC3(voltagedepended anion channel 3)直接结合, 干扰MTP功能, 引起线粒体跨膜电压的下降, 激活包括STAT3和NFKB在内的转录因子[6]。
细胞色素c氧化酶复合体(复合体Ⅳ)是最具特征的呼吸链酶复合物, 由13个亚基组成, 其中较大的亚基COXⅠ, COXⅡ和COXⅢ由mtDNA编码。我们前期研究发现的HBx结合蛋白COXⅢ是线粒体呼吸链酶复合物Ⅳ的重要组成部分, 对维持复合酶的聚集和稳定性中起重要作用, 并参与质子的传递和细胞色素c氧化酶介导的能量转换。
本实验结果提示, HBV X基因下调COXⅢ蛋白表达, 而对mRNA表达没有影响, 说明HBV X基因主要影响COXⅢ的转录后表达水平。细胞色素C氧化酶活性检测结果显示, HBV X基因可抑制COX酶活性, 可能的机制除了HBV X基因抑制COX Ⅲ蛋白表达外, HBx还可能通过与COX III结合改变其三维空间构象, 阻碍复合物Ⅳ 其他亚基与COXⅢ结合, 最终影响复合物Ⅳ装配, 导致复合物Ⅳ稳定性下降[7]。近期研究发现, 虽然复合物Ⅳ不直接参与电子链传递, 但是它有助于维持复合物Ⅰ的稳定性[8]。另外一些研究发现, 复合物Ⅳ也影响复合物Ⅱ和复合物Ⅲ的活性, 抑制复合物Ⅳ活性可影响复合物Ⅰ和复合物ⅡⅢ的活性, 进而影响呼吸链功能, 导致跨膜电位下降[9]。
除了为细胞提供能量以外, 线粒体也是很多重要中间代谢途径的场所, 比如糖, 氨基酸, 脂肪代谢等。最近的研究发现, 当线粒体呼吸链功能受损, 氧化磷酸化障碍时, 糖代谢作为一种代偿机制为机体提供能量, 但是效率明显低于氧化磷酸化过程。许多肿瘤细胞主要通过糖代谢而不是氧化磷酸化过程提供ATP[10]。本实验结果为研究HBV X基因在HCC发生、 发展过程中的作用机制提供了良好的基础。
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