作者:贺红焰 何进, 李隽, 王明勇, 刘建
【摘要】 目的: 研究血管紧张素(17)[Ang(17)]对转化生长因子β1(TGFβ1)诱导的大鼠肾小球系膜细胞(GMC)增殖的影响并初步探讨其机制。方法: 采用WST法检测培养系膜细胞增殖; RTPCR法检测细胞内信号传递分子Smad3/7基因mRNA的表达。结果: 与对照组比较, Ang(17)明显抑制TGFβ1诱导的GMC增殖(P&<0.05); 同时, Ang(17)对TGFβ1诱导的系膜细胞内Smad3, Smad7基因mRNA表达有明显的抑制作用(P&<0.05)。结论: Ang(17)对TGFβ1诱导的系膜细胞增殖有抑制作用, 其机制可能是通过下调细胞内信号传递分子Smad3/7的表达。
【关键词】 系膜细胞; 血管紧张素(17); 转化生长因子β1; 细胞增殖; Smad3/7
转化生长因子β1(transforming growth factorβ1, TGFβ1)是目前公认的最强的致纤维化作用的细胞因子, 在促进肾小球病变发生、 发展过程中起着重要的作用, 如调节肾小球固有细胞增殖、 促进细胞外基质(extracellular matrix, ECM)合成和分泌、 改变基质降解酶及其抑制因子的表达量和活性等。肾小球系膜细胞(GMC)是肾小球内一种固有的血管外周细胞, 大量实验研究证实, 该细胞的异常增殖在肾小球病变进展过程中起着重要的作用, 而TGFβ1对GMC具有明显的促增殖作用。血管紧张素(17) [Angiotensin(17), Ang(17)]是肾素血管紧张素家族中被新认识的一个重要成员, 国内外大量的实验以及我们既往的研究均证实Ang(17)可抑制AngⅡ、 内皮素1等多种因素引起的包括GMC在内的多种细胞增殖以及ECM的分泌[1, 2], 但它对TGFβ1所诱导的GMC增殖的影响尚无相关报道。我们研究Ang(17)对TGFβ1诱导的大鼠系膜细胞增殖及其对细胞内信号传递分子Smad3/7的影响, 旨在探讨Ang(17)对肾脏纤维化的影响及可能的作用机制, 为慢性肾脏疾病的防治提供新的思路和理论依据。
1 材料和方法
1.1 材料 大鼠肾小球系膜细胞购自武汉大学保藏中心; Ang(17)、 TGFβ1均购自美国Sigma公司; WST试剂盒购自碧云天生物技术有限公司, Smad3/7以及大鼠βactin引物由上海生工合成; RTPCR试剂盒由成都博瑞克生物技术有限公司提供; Taq酶由北京天根公司提供。
1.2 方法
1.2.1 GMC的培养 复苏细胞后将其加入RPMI1640培养液, 接种于培养瓶中, 放入培养箱中。至细胞长至亚融合状态.用2.5 g/L胰酶消化, 传代, 取生长旺盛的细胞做实验。
1.2.2 WST检测活细胞数目 将培养的大鼠肾小球系膜细胞用无血清的RPMI1640培养液制成(5~10)×107/L的细胞悬液, 接种在96孔板中, 每孔加入细胞悬液100 μL, 无血清培养24 h, 使其生长同步化, 当细胞生长融合至70%左右时加入干预因素, 药物干预24 h后, 每孔加入WST 100 μL, 37℃继续孵育4 h, 终止培养, 在酶联免疫检测仪上测定A490值, 用只加培养液不加细胞的空白孔调零。
1.2.3 Smad3/7mRNA表达测定 按说明书提取GMC总RNA, 逆转录为cDNA后进行PCR反应。扩增大鼠Smad3的引物序列为: 上游引物: 5′ACA GCA TGG ACG CAG GTT CT3′, 下游引物: 5′TCA CTG AGG CAC TCC GCA AA3′, 扩增片段长337 bp; 扩增大鼠Smad7的引物序列为: Smad7上游引物: 5′GGA GTC CTT TCC TCT CTC3′, 下游引物: 5′GGC TCA ATG AGC ATG CTT CAC3′, 扩增片段长125 bp, 扩增大鼠βactin 上游引物: 5′CCT TCC TGG GCA TGG AGT CCT G3′, 下游引物: 5′GGA GCA ATG ATC TTC ATC TTC3′, 扩增片段长205 bp), PCR反应共35个循环, 取产物15 μL于15 g/L琼脂糖凝胶中电泳, 用凝胶成像扫描及分析系统, 测定目的基因与内参基因的积分光密度比值, 用SPSS软件进行分析。
1.2.4 实验分组 (1)对照组(A组): 不加入任何干扰因素; (2) TGFβ1作用组(B组): 在培养液中加入TGFβ1(终浓度5 μg/L); (3)Ang(17)组(C组): 在培养液中加入Ang(17)(终浓度10-6 mol/L); (4)TGFβ1+ Ang(17)组(D组): 浓度同上。每组均为5个样本, 在96孔板中培养。药物干预时间均为24 h。
1.2.5 统计学分析 实验结果用x±s表示, 采用单因素方差分析(F检验和q检验)进行组间比较, P&<0.05表示差异有统计学意义。采用SPSS13.0软件进行统计学分析。
2 结果
2.1 Ang(17)对TGFβ1诱导GMC增殖的影响 与对照组相比, TGFβ1(5 μg/L)可明显促进GMC增殖(P&<0.05); Ang(17)(10-6 mol/L)明显抑制GMC增殖(P&<0.05); 同时Ang(17)组+TGFβ1的促细胞增殖作用也有明显抑制作用(P&<0.05, 表1)。 表1 Ang(17)对TGFβ1诱导GMC增殖的影响
2.2 Ang(17) 对TGFβ1诱导的肾小球系膜细胞smad3基因表达的影响 图1为smad3基因mRNA表达量变化的电泳图。经过凝胶成像分析, 与对照(A)组相比, B组TGFβ1(5 μg/L)可明显促进GMC Smad3 mRNA的表达 (P&<0.05); C组Ang(17)(10-6 mol/L)明显抑制Smad3 mRNA的表达(P&<0.05); 而Ang(17)+TGFβ1(D组)所诱导的Smad3表达也有明显的抑制(P&<0.05, 图2)。
2.3 Ang(17)对TGFβ1诱导的肾小球系膜细胞smad7基因表达的影响 图3为smad7基因mRNA表达量变化的电泳图, 经过凝胶成像分析, 与对照(A)组相比, B组TGFβ1(5 μg/L)可促进GMC Smad7 mRNA的表达 (P&<0.05); C组Ang(17)(10-6 mol/L)对Smad7 mRNA的表达无统计学意义(P&>0.05); 但Ang(17)+TGFβ1(D组)所诱导的Smad7的表达却有明显的抑制作用(P&<0.05, 图4)。图3 Smad7基因mRNA表达量变化的电泳图
3 讨论
肾脏纤维化是各种原因所致的终末期肾病的共同表现, 包括了肾小球硬化和肾小管间质纤维化, 是以ECM的过度积聚和沉积为特征的过程。研究发现TGFβ1可通过激活细胞内Smad蛋白通路引起肾小球的硬化[3]。Ang(17)是RAS家族的一个新成员, 具有扩管降压及调节水盐平衡等作用, Freeman等[4]首次发现Ang(17)对胎牛血清、 血小板衍生生长因子、 AngII的促平滑肌细胞生长作用具有明显的抑制作用, 并在胎牛血清所诱导的平滑肌细胞增殖中进行了量效研究, 发现Ang(17) (10-10~10-6 mol/L)呈剂量依赖性抑制胎牛血清的促平滑肌细胞增殖作用。Tallant等[1]研究也发现Ang(17)可明显抑制胎牛血清以及内皮素1诱导的新生大鼠心肌细胞肥大和心脏成纤维细胞增殖。我们以前的研究也发现Ang(17)可呈剂量依赖性抑制AngⅡ诱导的GMC增生以及HA(透明质酸)及PCⅢ(Ⅲ型前胶原)等细胞外基质的分泌[2]。目前Ang(17)对TGFβ1所致纤维化抑制作用的研究还较少, 现有的一些发现表明Ang(17)可通过抑制胞外信号调节激酶(ERK1/2), P38, JNK等的磷酸化来发挥抑制作用[5, 6], 但它能否通过对TGFβ/Smad通路的抑制来拮抗TGFβ1的致纤维化作用还未可知。最近有国外研究发现Ang(17)在改善心肌重塑的同时可降低血浆中TGFβ的水平[7], 而我们此次的研究证实, Ang(17)对基础状态下以及TGFβ1诱导下的肾小球系膜细胞的增殖均有抑制作用, 表明Ang(17)对TGFβ1致纤维化效应具有直接的抑制作用。近年来国外研究证实, Smad蛋白家族是TGFβ1细胞内信号转导过程中极其重要的介导分子[8]。TGFβ1与其受体结合后使Smad2、 3蛋白中的丝氨酸磷酸化(此步骤可被抑制性的Smad7所抑制), 磷酸化的Smad2, 3蛋白与Smad4蛋白结合转运到细胞核, 调节相关基因的转录。研究发现在体外培养的GMC中不仅有Smad2、 Smad3和Smad4蛋白, 而且它们可被TGFβ1激活并且参与了Col I等ECM的转录过程, 同时还可促进GMC基础性及经TGFβ1刺激后早期PAI1基因的表达, 当使用选择性Smad通路阻断剂SB 505124后能抑制TGFβ1诱导的ECM合成[3, 9]表明Smad通路在TGFβ1的致纤维化机制中起着重要的作用。我们的研究发现Ang(17)可抑制TGFβ1诱导的细胞内正性信号传递分子Smad3 mRNA的表达, 同时对其负性信号传递分子Smad7 mRNA的表达也有抑制作用, 说明Ang(17)对TGFβ1的抑制机制可能是通过对正性Smad分子的抑制来实现的, 而并非是促进负性信号传递分子的表达。
参考文献
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