作者:吴汉妮, 余玲, 屈新才, 钱伟, 肖波
【摘要】 目的: 检测桥本甲状腺炎(HT)甲状腺组织中白细胞介素(IL)23、 IL17的表达, 并探讨IL23/IL17在HT免疫病理中的作用。方法: 采用逆转录聚合酶链反应(RTPCR)和Western blot方法, 检测20例HT患者和15例正常甲状腺组织中IL23p19、 IL17mRNA和蛋白的表达水平。结果: RTPCR显示IL23p19、 IL17mRNA在HT甲状腺组织中的平均表达水平分别为1.0154±0.5749、 0.5952±0.2513, 正常对照组的表达水平分别为0.0929±0.0242、 0.1537±0.0855; 两组比较, HT患者甲状腺组织IL23p19、 IL17mRNA的表达水平显著高于正常对照(P&<0.05); 且在HT中, IL23p19和IL17mRNA的表达存在正相关(P&<0.01, r=0.861)。Western blot检测显示IL23p19、 IL17蛋白在HT甲状腺组织中的平均表达水平明显高于正常对照(P&<0.05)。结论: IL23、 IL17在HT患者甲状腺组织中的协同过表达, 提示IL23/IL17可能参与了HT的免疫病理过程。
【关键词】 桥本甲状腺炎; 白细胞介素23; 白细胞介素17
桥本甲状腺炎(hashimoto thyroiditis, HT)是器官特异性自身免疫性疾病, 确切的发病机制仍未清楚。目前较为一致的观点认为, 在遗传素质与环境因素相互影响的基础上, 机体免疫系统紊乱是导致HT发病的主要原因。传统理论认为, 自身反应性T细胞在HT的免疫机制中起关键作用。近期研究发现, 机体存在一种新的CD4+ T细胞亚型Th17, 产生IL17具有IL23依赖性[1-3]。相关研究表明, IL23/IL17与自身免疫病关系密切[4-6]。本研究拟通过检测HT患者甲状腺组织中IL23p19和IL17的表达水平, 探讨IL23/IL17在HT发病中的作用。
1 对象和方法
1.1 研究对象 2006-03/2007-06在华中科技大学同济医学院甲状腺手术的HT患者甲状腺样本20例(其中男6例, 女14例), 年龄37~54岁, 平均(44.17±9.33)岁, 均因甲状腺肿出现气管压迫症状或疑诊为甲状腺癌施行手术, 术后病理证实为桥本甲状腺炎。15例甲状腺腺瘤旁的“正常”甲状腺组织作为对照(其中男5例, 女10例), 年龄35~56岁, 平均(45.33±9.41)岁, 经病理证实无肿瘤细胞的浸润。
1.2 方法
1.2.1 逆转录聚合酶链反应(RTPCR) 根据GenBank人IL23p19、 IL17的cDNA序列设计引物, 以GAPDH作为内参照。引物序列由上海英俊公司合成: IL23p19: 5′ACAACTGAGGGAACCAAACCA3′, 5′CAGCAGCAACAGCAGCATTAC3′; IL17: 5′GGCTGGAGAAGATACTGGTGT3′, 5′TTTAGTCCGAAATGTAGGCTGT3′; GAPDH: 5′AGTCAGCCGCATCTTCTTTT3′, 5′GAGTCCTTCCACGATACCAA3′。取甲状腺组织, 用TRIzol(Invitrogen公司)提取总RNA, 并逆转录为cDNA(Promega公司)。通过预实验确定各项检测指标的PCR反应条件和最适循环数, 以保证PCR产物量与起始cDNA量呈线性相关。IL23p19、 IL17的PCR反应条件: 94℃ 5 min, 1循环; 94℃ 45 s, 54℃ 45 s, 72℃ 45 s, 35循环; 72℃ 7 min, 1循环; 产物长度均为172 bp。GAPDH: 94℃ 5 min, 1循环; 94℃ 45 s, 53℃ 45 s, 72℃ 45 s, 35循环; 72℃ 7 min, 1循环; 产物长度575 bp。取4 μL PCR产物电泳, SensiAnsys凝胶图像分析系统分析电泳条带的光密度值, 用相对光密度值代表mRNA的表达量。相对光密度值=(IL23p19或IL17光密度值/GAPDH光密度值)×100%。
1.2.2 Western blot检测 取甲状腺组织标本, 单去污裂解液提取组织蛋白, 考马斯亮蓝法测蛋白浓度。每例标本取50 μg蛋白样品进行SDSPAGE电泳, 转膜, 然后用含30 mL/L牛血清白蛋白的TBS缓冲液(三氨基甲烷缓冲盐溶液)封闭1 h, 再加兔抗人IL17多克隆抗体(PEPROTECH公司), 4℃过夜。含2 mL/L Tween的TBS缓冲液洗膜3次, 加辣根过氧化物酶标记的羊抗兔二抗(深圳晶美公司), 37℃孵育1 h。洗膜3次, ECL显色, 暗室显影。同法检测IL23p19蛋白表达, 所用试剂: 一抗为鼠抗人IL23p19多克隆抗体(美国BIOLEGEND公司), 二抗为辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠抗体(深圳晶美公司)。以βactin(美国SANTA CRUZ公司)作为内参照。用ImagePro Plus 5.0图像分析软件分析条带的光密度值, 用相对光密度值代表蛋白的表达量, 相对光密度值=(IL23p19或IL17光密度值/βactin的光密度值)×100%。
1.2.3 统计学分析 采用SPSS10.0软件进行统计学分析。所有数据用x±s表示, 两组间均数比较采用独立样本t检验, 显著性水准P&<0.05。相关分析采用Spearman 秩相关分析法分析, 以P&<0.01为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 甲状腺组织中IL23p19、 IL17表达水平 与对照组相比, HT组IL23p19、 IL17mRNA和蛋白的平均表达水平均显著升高, 差异有统计学意义(P&<0.05, 表1)。RTPCR电泳图中可见, 对照组和HT组在172 bp处都有IL23p19和IL17条带出现, 但在HT组的表达强度明显高于对照组(图1)。Western blot图中可见, IL23p19和IL17蛋白表达在HT组显著高于对照组(图2)。
表1 IL23 p19、 IL17mRNA和蛋白在两组甲状腺组织的平均表达水平(略)
aP&<0.05 vs 对照组.
图1 IL23 p19、 IL17 mRNA的RTPCR电泳分析(略)
M: DNA markers; 1, 2: 对照组; 3-7: HT组.
图2 IL23 p19、 IL17蛋白的Western blot分析(略)
1, 2: 对照组; 3-8: HT组.
2.2 IL23p19和IL17 在HT中的表达相关性 IL23p19和IL17mRNA在HT甲状腺组织中均高表达, 经Spearman秩相关分析, IL23p19和IL17的表达存在显著正相关(P&<0.01, r=0.861)。
3 讨论
本研究结果显示, IL17和IL23p19 mRNA和蛋白在HT组的表达水平都显著高于正常对照组, 差异具有统计学意义。IL17在HT中的高表达提示甲状腺组织中存在异常活化的Th17细胞。IL23是IL12家族中的一员, 由p40和p19两个亚单位组成, 其中p40与 IL12共用, 而p19是IL23独特的亚单位, 因此p19在HT甲状腺组织中的高表达即IL23异常表达。相关性分析发现在HT组IL17和IL23p19的表达呈正相关性, 提示IL23对HT甲状腺炎症组织中Th17细胞的增殖和存活有重要意义。因此推测, IL23刺激Th17细胞的增殖和维持其存活, 进而Th17细胞分泌IL17可能介导HT的免疫机制。
Th17细胞的发现及其在自身免疫性疾病中的重要作用需要重新评价Th1型细胞在自身免疫性疾病中的调节作用。尽管有研究IL23p19缺陷而不是IL12p35缺陷的小鼠可以抵抗胶原诱导的关节炎(CIA)和实验性自身免疫性脑脊髓膜炎(EAE)[7, 8]; IFNγ缺陷鼠或IFNγ受体缺陷鼠无IFNγ信号, 仍可发生自身免疫病, 甚至对自身免疫病更敏感[9]。我们并不能否认IL12及Th1细胞在HT及其他自身免疫性疾病中的重要作用。Bettelli等[10]在EAE的中枢神经系统(CNS)中细胞因子的动态表达证实, 在EAE的高峰期, CNS中有Th17及Th1细胞因子, 而在恢复后明显减少; IL17峰出现在IFNγ之前, 而IFNγ可在靶组织内持续较长时间, 甚至在IL17表达消失后仍有表达。因此认为Th17和Th1可能协同诱导器官特异性自身免疫性疾病, 在疾病的不同阶段发挥作用。且在抗原呈递细胞存在的条件下, IL17可以抑制Th1细胞的分化, 而IFNγ则可抑制Th17细胞的分化[11]。Barin等[12]曾发现IFNγ在自身免疫性甲状腺炎有疾病抑制作用, 认为IFNγ有免疫激活和免疫抑制双重活性, 哪一种活性在优势取决于IFNγ的分泌时间和部位。藉此, 我们推测, Th17可能弥补了Th1介导效应机制的不足, 在HT的炎症反应过程中, Th17和Th1细胞制约平衡可能协同诱导HT的发生发展。Th17比Th1产生快, 启动急性炎症反应, IL23刺激Th17细胞分泌IL17在炎症反应的早期可能发挥主导作用; 而IL12刺激Th1分泌IFNγ在其后维持炎症反应中发挥作用。
总之, 本实验表明Th17细胞分泌IL17可能参与了HT的发生发展, 其存活因子IL23在此过程中发挥间接作用, 但Th17细胞在HT甲状腺组织的免疫紊乱中的具体机制及其与Th1可能的协同作用机制尚需进一步的研究。
参考文献
[1] Harrington LE, Mangan PR, Weaver CT, et al. Expanding the effector CD4 Tcell repertoire: the Th17 lineage[J]. Curr Opin Immunol, 2006, 18(3): 349-356.
[2] Harrington LE, Hatton RD, Mangan PR, et al. Interleukin17producting CD4+ effector T cells develop via lineage distinct from the T helper type1 and 2 lineages[J]. Nat Immunol, 2005, 6(11): 1123-1132.
[3] Aggarwal SN, Ghilardi MH, Xie FJ, et al. Interleukin23 promotes a distinct CD4 T cell activation state characterized by the production of interleukin17[J]. J Biol Chem, 2003, 278(3): 1910-1914.
[4] Langrish CL, Chen Y, Blumenschein WM, et al. IL23 drives a pathogenic T cell population that induces autoimmune inflammation[J]. J Exp Med, 2005, 201(2): 233-240.
[5] Veldhoen M, Hocking RJ, Atkins CJ, et al. TGFβ in the context of an inflammatory cytokine milieu supports de novo differentiation of IL17producing T cells[J]. Immunity, 2006, 24(2): 179-189.
[6] Iwakura Y, Ishigame H. The IL23/IL17 axis in inflammation[J]. J Clin Invest, 2006, 116(5): 1218-1222.
[7] Murphy CA, Langrish CL, Chen Y, et al. pergent proand antiinflammatory roles for IL23 and IL12 in joint autoimmune inflammation[J]. J Exp Med, 2003, 198(12): 1951-1957.
[8] Cua DJ, Sheriock J, Chen Y, et al. Interleukin23 rather than interleukin12 is the critical cytokine for autoimmune inflammation of the brain[J]. Nature, 2003, 421(6924): 744-748.
[9] Matthys P, Vermeire K, Heremans H, et al. The protective effect of IFNγ in experimental autoimmune diseases: a central role of mycobacterial adjuvantinduced myelopoiesis[J]. J Leukoc Biol, 2000, 68(4): 447-454.
[10] Bettelli E, Oukka M, Kuchroo VK. TH17 cells in the circle of immunity and autoimmunity[J]. Nature Immunology, 2007, 8(4): 345-350.
[11] Nakae S, Yoichiro Lwakura, Suto H, et al. Phenotypic differences between Th1 and Th17 cells and negative regulation of Th1 cell differentiation by IL17[J]. J Leukoc Biol, 2007, 81(1): 1-11.
[12] Barin JG, Afanasyeva M, Talor MV. Thyroidspecific expression of IFNγ limits experimental autoimmune thyroiditis by suppressing lymphocyte activation in cervical lymph nodes[J]. J Immunol, 2003, 170(11): 5523-5529.