关于人granzyme B基因在HeLa细胞中的表达

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论文字数:**** 论文编号:lw202397436 日期:2025-03-20 来源:论文网
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       作者:赵晶 许彦鸣 贾林涛 于翠娟 陈蕾 黄威权 王成济 杨安钢

【关键词】 基因表达
  关键词: granzyme B;基因表达;HeLa细胞
  摘 要:目的 构建携带人granzyme B基因的真核表达载体,并将其在HeLa细胞中表达. 方法 用反转录PCR获取人granzyme B全长cDNA序列,将其活性型序列克隆进pcD-NA3重组表达质粒.脂质体法转染HeLa细胞,间接免疫荧光检测目的蛋白表达,HE染色观察其对转染HeLa细胞形态的影响. 结果 成功获得了野生型granzyme B cDNA,构建了编码活性型granzyme B的真核表达载体pcDNA3-G.转染HeLa细胞后观察到目的蛋白表达,转染细胞形态发生变化,出现多核大细胞及固缩小细胞. 结论 活性型granzyme B哺乳动物表达系统的建立,为进一步研究granzyme B的生物学效应奠定了基础.
    
  Keywords:granzyme B;gene expression;HeLa cells
  
  Abstract:AIM To construct eukaryotic expression vector carrying human granzyme B gene and express it in HeLa cells.METHODS RT-PCR was used to obtain human granzyme B cDNA.Then the recombinant expression vector pcDNA3-G was constructed by cloning active ganzyme B into eukaryotic expression vector pcDNA3.After transfection into HeLa cells through lipofectamine2000
TM ,the expression of target gene was detected by indirect immunofluorescence as-say and its effect on HeLa cells was observed by HE staining.RESULTS The obtained human granzyme B cDNA was con-sistent with that in GenBank.The eukaryotic expression vec-tor pcDNA3-G encoding active granzyme B was successfully constructed and expressed in HeLa cells.Some transfected cells grew bigger than the control,often with multiple nuclei,while others exhibited condensed nucleus and cyto┐plasm.CONCLUSION The establishment of mammalian expression system of active granzyme B is of significance in further research for granzyme B.
  
  0 引言
  
  granzyme B,即颗粒酶B,是杀伤性T淋巴细胞(CTL)和自然杀伤(NK)细胞颗粒(granule)中最重要的丝氨酸蛋白酶,在颗粒介导的靶细胞凋亡中起关键作用[1,2] .它最初以酶原形式合成,在内质网中加工除去N端信号肽后,贮存于CTL的颗粒中.当CTL接受抗原刺激时,granzyme B被切除N端酸性二肽,成为活性型granzyme B[3] .活性型granzyme B通过穿孔素或受体进入靶细胞,广泛切割含Asp-X,Glu-X位点的多种底物蛋白,引起细胞凋亡[4-8] .目前对其促凋亡功能的研究局限于纯化granzyme B天然或重组蛋白,或分离表达granzyme B的CTL,体外与靶细胞孵育.我们克隆获得了人granzyme B全长cDNA序列,并将活性型序列转染HeLa细胞,观察表达产物对转染细胞的直接效应.
  
  1 材料和方法
  
  1.1 材料 pUC19质粒、pcDNA3质粒、E.coli DH5α宿主菌和人宫颈癌细胞系HeLa均为本室保存;淋巴细胞分离液为华美公司产品;PHA-P购自Sigma公司;限制性内切酶、Taq酶、反转录试剂盒、RPMI1640,DMEM,新生牛血清及脂质体lipofec-tamine2000TM 均购自Gibco公司;T4 DNA连接酶为TaKaRa产品;plasmid purification kit购自上海华舜公司;山羊抗人granzyme B多克隆抗体为Santa Cruz产品;生物素化兔抗山羊二抗及SABC-Cy3为博士德产品;测序试剂盒购自PE公司.
  1.2 方法
  
  1.2.1 人granzyme B cDNA的获取及克隆 用淋巴细胞分离液分离健康人外周血单个核细胞,0.015g L-1 PHA-P刺激培养72h,加Trizol试剂提取总RNA.设计引物GRBF,GRBR,序列如下.GRBF为:5’-TTTGGATCCATGCAACCAATCCTGCT-TCT-3’;GRBR为:5’-TTTGAATTCTTAGTA-GCGTTTCATGGTTT-3’.以GRBR为引物,按试剂盒说明书反转录出cDNA第一链,用GRBF和GRBR引物PCR得到granzyme B双链cDNA.BamHI,EcoRI双酶切PCR产物及pUC19质粒,连接、转化入E.coli DH5α,酶切鉴定后测序,重组克隆质粒命名为pUC19-GrB.
  
  1.2.2 活性型granzyme B基因的真核表达载体构建 设计引物GF和GR,GF为:5’-TTTGAATTC-ATGATCATCGGGGGACATGAGGC-3’;GR为:5’-TTTTCTAGAGGATCCTTAGTAGCGTTTC-ATGGTTTT-3’.以pUC19-GrB为模板,PCR获得除去N端信号肽及酸性二肽的活性型granzyme B基因,以EcoRI,XbaI双酶切后克隆入pcDNA3相应位点,酶切鉴定并测序证实,重组表达质粒命名为pcDNA3-G.
  
  1.2.3 pcDNA3-G质粒的转染及其表达鉴定 转染前将对数生长的HeLa细胞重铺于6孔板中,待细胞长至80%覆盖率时进行转染.取3μg DNA,6μL lipofectamine2000TM 各加入100μL无血清DMEM中,轻轻混合,室温孵育20min.细胞用无血清DMEM洗2次,加800μL无血清DMEM,滴加转染液,37℃,50mL L-1 CO2 培养8h后弃转染液,换含100mL L-1 小牛血清的DMEM继续培养.同时设置未转染HeLa对照及转染pcDNA3空载体对照.转染后8h消化转染细胞,适量滴加至预先酸处理过的盖玻片上,37℃,5mL L-1 CO2 放置1h使细胞贴壁,补加足量培养液继续培养至48h取出盖玻片.PBS(pH7.4)洗2次,40g L-1 多聚甲醛固定30min,PBS再洗2次,经0.1mL L-1 Triton孵育,血清封闭等处理后,依次加入1 200稀释的山羊抗人granzyme B蛋白多克隆抗体,1 100稀释的生物素化兔抗山羊二抗,1 100稀释的SABC-Cy3,激光共聚焦显微镜观察并照相,激发波长为554nm,发射波长为568~574nm.
  1.2.4 pcDNA3-G转染细胞的HE染色 取出转染后72h的HeLa细胞爬片,经苏木素染色,盐酸乙醇分色,伊红复染,脱水透明,封片照相.
  
  2 结果
  
  2.1 RT┐PCR获取人granzyme B cDNA 提取健康人外周血单个核细胞的总RNA,反转录合成cDNA,以GRBF和GRBR引物扩增出约760bp的片段(Fig1).将其克隆入pUC19后酶切鉴定(Fig2),并进行序列测定,结果与GenBank中人granzyme B序列完全一致.
  
  图1 - 图2 略
  2.2 活性型granzyme B基因的扩增及其真核表达载体构建 以pUC19-GrB为模板,用GF和GR引物扩增获得约700bp的活性型granzyme B基因(Fig3),克隆入pcDNA3后双酶切鉴定(Fig4).测序结果表明所获序列完全正确. Lane1:DL2000marker;Lane2:Active granzyme B gene.
  图3 略
  
  2.3 pcDNA3┐G在HeLa细胞中表达的鉴定 转染后48h取出HeLa细胞爬片,进行间接免疫荧光染色,激光共聚焦显微镜观察,pcDNA3-G转染组检测到granzyme B在胞质中表达(Fig5).
  
  2.4 活性型granzyme B对转染HeLa细胞形态的影响 转染目的基因72h后的HE染色结果表明,与转染pcDNA3空载体组相比,pcDNA3-G转染组出现多核大细胞,以及细胞质和细胞核固缩的小细胞(Fig6).

 图4 - 图6 略
  
  3 讨论
  
  granzyme B属于丝氨酸蛋白酶家族,在CTL和NK细胞介导的靶细胞凋亡中发挥重要作用.目前对其功能的研究方法是纯化天然granzyme B蛋白,或提纯细菌、酵母、昆虫表达系统生产的重组granzyme B蛋白,或分离表达granzyme B的CTL,与靶细胞孵育.Smyth等[9] 虽构建granzyme B活性型与非活性型(含酸性二肽)的真核表达载体,并在哺乳动物COS细胞中瞬时表达,但也仅检测了其切割底物的生化性质,未涉及表达的granzyme B对转染细胞自身的形态学观察.Bochan等[10] 将granzyme B和perforin(穿孔素)的反义核酸稳定转染特定的CTL,观察到可显著抑制颗粒介导的靶细胞凋亡作用.Pinkoski等[11] 把活性型granzyme B蛋白显微注射入MCF-7细胞的胞质内,可诱导靶细胞发生凋亡.尚未见granzyme B基因异位表达及对转染细胞的形态学研究.
  
  granzyme B最初以酶原合成,在内质网中切除信号肽后,在CTL的颗粒中稳定贮存.当CTL识别靶细胞膜表面抗原时,granzyme B被颗粒中的二肽酰肽酶I(dipeptidyl peptidase I)加工去除N端酸性二肽,成为活性形式.活性型granzyme B通过穿孔素或受体进入靶细胞,在胞质及胞核中切割含Asp-X,Glu-X位点的多种结构和功能蛋白,导致细胞凋亡.表达granzyme B的CTL采取自我保护机制预防自杀,而靶细胞接受外源的活性型granzyme B走向死亡.把活性型granzyme B异位表达于HeLa细胞,观察表达产物对转染细胞的直接作用,将为granzyme B功能研究开辟新的途径.
  
  我们将去除N端信号肽和酸性二肽的活性型granzyme B基因转染人HeLa细胞,观察到异位表达活性型granzyme B的部分细胞体积增大,甚至出现多核现象.HE染色进一步观察,多核的大细胞与胞质、胞核固缩的小细胞同时并存.上述结果提示异位表达的活性型granzyme B分子对细胞可能存在较复杂的作用机制.
  参考文献:   
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