作者：曹宏伟， 马金柱， 夏红兵， 张大生， 朱战波， 崔玉东， 朴范泽
【关键词】 牛白细胞黏附缺陷病（BLAD）; 白细胞; 牛
1974 年， 世界上首次报道人发生一种容易感染、白细胞增生和趋化、吞噬功能缺陷的疾病， 1984 年确定其病因， 它是一种与白细胞黏附有关的细胞表面糖蛋白整合素表达缺陷所致， 并定名为白细胞黏附缺陷病［1］。1983 年报道了牛白细胞黏附缺陷病(bovine leukocyte adhesion deficiency， BLAD)［2］， 该病是一种常染色体单基因隐性遗传疾病， 病因为白细胞表面整合素CD18（β2）亚单位383位碱基由A突变为G， 与之相应的位于胞外高度保守区的128位天门冬氨酸突变成甘氨酸， 致使白细胞表面的β2整合素表达明显减少或缺乏， 白细胞的黏附、 趋化、 吞噬和过氧化物生成等功能下降， 进而导致中性粒细胞不能黏附到血管壁而到达炎症部位发挥病原清除作用， 使机体出现严重的重复感染［3］。BLAD主要发生于1～14个月龄的Holstein牛， 且多在犊牛时期死亡， 但Muller 等［4］进一步研究发现，一旦病牛超过12月龄， 感染的严重性和频率下降， 而且只需要零星的抗生素治疗即可维持其生存。2004年10月， 我们对成年奶牛进行BLAD携带情况调查时， 在大庆市某牛场发现1头3.5岁Holstein奶牛为BLAD病牛， 该牛经常发生感染和不断使用抗生素治疗。为了解该BLAD病牛的白细胞功能变化情况， 本研究中对白细胞的黏附、趋化、吞噬和过氧化物生成等功能进行了检测。
1 材料和方法
1.1 材料
患有BLAD的Holstein奶牛(编号为1054) 和同龄健康牛（编号为1038）均来自于黑龙江省大庆市奶牛繁殖育种中心; 酵母菌和酵母聚糖zymosan为Sigma公司产品; 发光氨 Luminol为 Aldrich产品。
1.2 方法
1.2.1 白细胞的分离和计数
以肝素 (20×104 U/L)为抗凝剂， 从奶牛的尾静脉中采血10 mL。将抗凝血以2 000 r/min 于常温离心10 min， 血液分为3层， 中间层为白细胞层。用移液管先吸掉上层液， 再将白细胞层移到另一离心管内， 加入6倍体积的8.3 g/L NH4Cl溶液， 37℃水浴5 min， 使带入的红细胞裂解后， 以2 000 r/min 离心10 min沉淀白细胞， 然后用Hank’s平衡盐溶液 (HBSS)洗涤白细胞3次后， 将白细胞以5×109/L的密度悬浮于HBSS中， 经Wright Giemsa染色镜检， 细胞存活状态良好。利用常规血细胞计数方法对以上BLAD牛和健康牛进行白细胞计数3次， 然后取平均值作为最后结果。
1.2.2 白细胞黏附性测定
将预热5 min的1 mL含有自体10%血浆的白细胞（5×109 /L）悬液加入尼龙毛柱里， 之后对流出的白细胞计数。根据公式计算白细胞黏附率: 白细胞黏附率=100-（流出细胞数/初始细胞数×100）。
1.2.3 白细胞趋化反应测定
在琼脂糖凝胶平皿上打两组孔， 每3孔为1组， 孔的直径为2.5 mm， 孔和孔的距离为 2.5 mm。中央孔加10 μL的白细胞悬浮液（1×109/L）， 外孔加入以自体新鲜血清处理过的酶母聚糖zymosan 10 μL， 内孔加入10 μL HBSS作对照液; 将平板放在含有5 mL/L CO2的潮湿培养箱中于37℃温育2 h后， 在平皿中加满99%的甲醇， 室温30 min后， 轻轻倒出甲醇， 再加满37%甲醛溶液， 室温放置60 min后， 除去甲醛溶液， 之后再移去琼脂糖， 用WrightGiemsa方法对平皿中的白细胞进行染色， 然后用测微目镜观察细胞的游走情况和趋化性。
1.2.4 白细胞吞噬功能测定
将200 μL白细胞（1.5×1010/L）、100 μL稀释血清和200 μL酵母悬浮液（2.5×1014/L）混合后， 以低速摇床中37℃温育30 min， 其后， 加入2mL冰冷的HBSS， 再进行400g离心10min， 在沉淀中加入2滴0.1g/L的品红染液， 然后用显微镜观察白细胞的吞噬情况。最后计算出在100个白细胞中吞噬酵母菌和未吞噬酵母菌的白细胞数， 并得出白细胞的吞噬率。
1.2.5 过氧化物生成测定
过氧化物生成测定是使用发光氨Luminol通过化学发光法检测的。取96孔微孔板， 每孔中加入容量为350μL， 其中含3×106个白细胞， CaCl2浓度为0.5mmol/L， MgCl2浓度为1mmol/L， Luminol浓度为10μmol/L， HRP浓度为50mg/L， 于37℃温育5 min， 再加入温浴的35 μL血清调理过的酵母聚糖zymosan (10 g/L)， 用发光检测仪于37℃检测每孔的化学发光值［5］。
2 结果
2.1 白细胞计数
BLAD牛和健康牛白细胞均经3次计数， 经过计算正常牛白细胞数为 (7.6±0.22)×109/L， BLAD牛白细胞数为 (27.5±0.29)×109/L， BALD牛白细胞数约是正常牛的3.6倍。
2.2 白细胞黏附性测定
对白细胞的黏附性进行重复检测， 结果BLAD牛白细胞黏附到尼龙纤维上的黏附率要比正常牛白细胞低很多（P&<0.05）， 说明BLAD牛白细胞的黏附功能明显降低（表1）。表1 BLAD牛和正常牛白细胞的黏附率检测（略）
2.3 白细胞趋化反应测定
对白细胞趋化反应检测结果为， BLAD牛白细胞的任意游走范围(R)为(2.1±0.25)mm， 趋化反应(C)为(3.3±0.16)mm; 而正常牛白细胞的游走范围(R)为(2.77±0.24)mm， 趋化反应(C)为(4.33±0.21)mm。BLAD牛白细胞趋化反应要比正常牛白细胞的趋化反应明显降低（P&<0.05）。
2.4 白细胞吞噬功能测定
对白细胞吞噬功能检测结果为， 正常白细胞对酵母的吞噬率为82%左右， 而且在镜下观察到多数白细胞吞噬2～5个酵母， 仅有少数白细胞吞噬1～2个酵母; 相比之下， BLAD牛白细胞对酵母的吞噬率为25.7%左右， 观察到大部分白细胞能够吞噬1～2个酵母， 仅有极少数的白细胞能够吞噬2～3个酵母。表明BLAD牛白细胞吞噬能力要比正常牛白细胞的吞噬能力明显下降（P＜0.05）。
2.5 过氧化物生成测定
对白细胞过氧化物生成检测结果为: 正常牛白细胞的过氧化物产生随时间的延长而增加， 在300 s左右时达到峰值， 随后下降（图1）; 相比之下， BLAD牛白细胞过氧化物产生的量较少， 增加缓慢， 在900 s时达到峰值， 且光发射强度约为正常牛白细胞的1/3。结果表明BLAD牛白细胞过氧化物生成量比正常牛白细胞明显降低。
3 讨论
白细胞整合素家族包括LFAl (CD11a/CD18)、Mac1 (CD11b/CD18) 和p150， 95 (CD11c/CD18)三种分子， 它们具有共同的CD18（β2）链， 其中LFA1在白细胞稳固黏附到血管内皮上和穿过血管内皮的移行中起主要作用， Mac1是一种主要的吞噬细胞受体， 同整合素p150， 95一起发挥作用， 识别作为配体的纤连蛋白和补体片段iC3b［6］。由于BLAD牛白细胞表面整合素亚单位CD18分子383位的碱基由A变为G(A383G)， 与之相应的位于胞外高度保守区的128位的天门冬氨酸变成了甘氨酸， 致使白细胞表面的CD18整合素表达明显减少或缺乏， 而使白细胞在炎症反应时不能利用整合素穿过血管壁到达病原侵入部位， 而使机体临床发病。
通过对BLAD牛白细胞研究表明， 该病牛白细胞的数量明显增加， 这可能是因为整合素亚单位（CD18）的功能缺陷引起白细胞功能下降的代偿性增强所致。另外， 这头BLAD牛白细胞的黏附和趋化功能的降低可能与LFA1分子功能改变有直接关系; BLAD牛白细胞的吞噬功能明显下降可能与Mac1和p150， 95二者发挥的调理作用缺陷有一定关系; 调理的酵母聚糖刺激BLAD牛白细胞过氧化物产生的减少可能与整合素亚单位（CD18）沟通细胞内外的桥梁作用和细胞信号传导作用的减弱甚至消失有关。本研究对这头病牛白细胞各项白细胞功能进行检测表明， 这头BLAD牛白细胞的黏附、趋化、吞噬和过氧化物产生等功能与正常牛白细胞相比均明显降低， 这些研究结果与国外的研究结果相符［7］。正是因为如此， 该病牛在临床上才经常出现感染， 并常常需要使用抗生素进行治疗， 因此增加了养牛成本， 使该牛于2005年11月被淘汰。本研究中没有对BLAD牛白细胞的整合素表达量及其亚单位（CD18）构象变化方面进行研究， 同时也没未对BLAD牛白细胞中钙离子浓度进行检测， 尚需今后进一步研究才能够更加深入认识BLAD发病机制。
参考文献
［1］Kishimoto TK， Hollander N， Robert TM， et al. Heterogeneous mutations in the beta subunit common to the LFA1， Mac1 and p150， 95 glycoproteins cause leukocyte adhesion deficiency［J］. Cell， 1987， 50: 193-202.
［2］Hagemoser WA. Roth JA， Lofstedt J， et al. Granulocytopathy in a Holstein heifer［J］. J Am Vet Med Assoc， 1983， 183: 1093-1094.
［3］Gerardi AS. Bovine leukocyte adhesion deficiency: a review of a modern disease and its implications［J］. Res Vet Sci， 1996， 61: 183-186.
［4］Muller KE， Bernadina WE， Kalsbeek HC， et al. Bovine leukocyte adhesion deficiency clinical course and laboratory findings in eight affected animals［J］. Vet Q， 1994， 16: 27-33.
［5］崔玉东. 胞浆Ca2+和某些激酶对NADPH氧化酶激活和肌动蛋白聚合的作用［J］. 中国生物化学与分子生物学报， 2001， 17(1): 98-104.
［6］崔玉东， 朴范泽.牛白细胞黏附缺陷病的研究进展［J］. 中国兽医学报， 2001，21: 204-206.
［7］Nagahata H， Nochi H， Tamoto K， et al. Bovine leukocyte adhesion deficiency in Holstein cattle［J］. Can J Vet Res， 1993， 57: 225-261.