作者:冯永路, 刘 爽, 邵丽丽, 单保恩
【摘要】 目的: 研究白细胞介素23(IL23)在小鼠乳腺癌中的抗肿瘤作用及其免疫功能变化。方法: 将逆转录病毒介导转染IL23基因的小鼠乳腺癌细胞(IL23/MA891)、 转染逆转录病毒空载体的小鼠乳腺癌细胞(LXSN/ MA891)及亲代小鼠乳腺癌细胞(MA891)分别接种于小鼠皮下, 观察小鼠成瘤及肿瘤生长情况; 30 d时取3组小鼠脾脏和肿瘤组织, 用ELISA法检测3组小鼠脾细胞在MA891诱导下IFNγ、 TNFα、 IL12和IL4的产生情况; 用流式细胞术(FCM)检测肿瘤组织细胞表面分子MHCⅠ、 MHCⅡ 、 CD80、 CD86的表达, 检测脾细胞中CD11c阳性细胞的比率, 并对脾细胞中CD4+、 CD8+淋巴细胞进行分选; 用免疫组织化学技术对3组肿瘤组织中CD4+、 CD8+淋巴细胞浸润情况进行检测。结果: IL23基因转染组小鼠皮下结节生长速度明显慢于接种空载体转染组及未转染组; 接种IL23/MA891细胞的小鼠脾细胞可产生较水平的IFNγ、 TNFα 和IL12等Th1类及相关细胞因子, 与接种LXSN/MA891细胞和MA891细胞2组小鼠的脾细胞相比明显增高(P&<0.01), 而Th3类细胞因子IL4的水平却无统计学意义(P&>0.05); 接种IL23/MA891细胞组小鼠脾细胞中CD11c阳性细胞率、 CD4+、 CD8+淋巴细胞比率以及肿瘤组织中CD4+、 CD8+淋巴细胞浸润程度均较LXSN/MA891、 MA891组明显增加(P&<0.01); IL23/MA891细胞组小鼠肿瘤组织细胞表面MHCⅠ、 MHCⅡ 、 CD80、 CD86分子的表达明显提高(P&<0.01)。结论: 转染IL23基因的小鼠乳腺癌细胞所分泌的IL23具有生物学活性, 增强了细胞免疫功能, 在小鼠体内发挥了明显的抗肿瘤作用。
【关键词】 白细胞介素23; 抗肿瘤; 免疫机制; MA891
肿瘤的发生和发展是多种因素作用的结果。机体免疫功能在控制肿瘤的发生和发展方面发挥着重要的作用[1], 机体免疫监视功能的下降, 肿瘤细胞产生的免疫抑制因素以及肿瘤细胞的免疫逃逸作用等是肿瘤发生和发展的原因之一[2], 因此, 提高机体的免疫功能, 就有可能起到抗肿瘤的作用。白细胞介素23(IL23)是2000年发现的一种由p19亚基和p40亚基共同构成的1种细胞因子[3], 主要来源于活化的单核巨噬细胞和树突状细胞(DC), 是1种具有与IL12功能相近但更复杂的细胞因子。有报道提出, IL23可通过诱导和增强小鼠脾细胞CTL活性和IFNγ等细胞因子的产生而发挥抗肿瘤作用[3], 但与IL12相比, 不会诱导淋巴细胞产生高水平的γ干扰素(IFNγ), 减少了毒副作用。因此, IL23作为肿瘤基因治疗的候选因子越来越受到关注。我们将转染有鼠IL23基因并能分泌IL23的小鼠乳腺癌细胞(IL23/MA891)接种于津白Ⅱ号小鼠体内观察肿瘤生长情况, 研究IL23体内抗肿瘤作用及其免疫机制。
1 材料和方法
1.1 材料 逆转录病毒介导转染IL23基因的小鼠乳腺癌细胞(IL23/MA891)、 转染逆转录病毒空载体的小鼠乳腺癌细胞(LXSN/MA891)及亲代小鼠乳腺癌细胞(MA891)由河北医科大学第四医院科研中心保存(这些细胞用含有100 mL/L胎牛血清(FCS)的RPMI1640培养基培养)。津白Ⅱ号小鼠(雌性, 6~8周龄)购自天津医科大学实验动物中心。IFNγ、 TNFα和IL4 ELISA检测试剂盒为晶美公司产品; IL12 ELISA检测试剂盒购自上海森雄公司; FITC标记的抗小鼠CD11c、 CD80、 CD4、 CD8单克隆抗体(mAb)及PE标记的CD86 mAb抗均购自Biolegend公司; FITC标记的抗小鼠MHCⅠ类分子mAb和PE标记的抗小鼠MHCⅡ类分子mAb购自Ebioscience公司; 兔抗鼠CD4、 CD8抗体、 山羊抗兔IgG抗体及SP试剂购自北京中杉金桥公司。
1.2 方法
1.2.1 小鼠荷瘤实验 将津白Ⅱ号小鼠随机分为3组, 分别于右侧背部皮下注射0.1 mL(含5×105个活细胞)的IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞。观察小鼠成瘤及肿瘤生长情况, 各组小鼠每隔2 d用游标卡尺测量皮下肿瘤长径和短径, 用下列公式计算肿瘤体积: 肿瘤体积(cm3)=长径×短径2×1/2。
1.2.2 脾细胞分泌细胞因子的检测 于接种IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞后30 d, 分别取3组各6只小鼠脾脏, 无菌制备脾细胞悬液, 按每孔0.1 mL脾细胞(含2×105个)和0.1 mL丝裂霉素处理的MA891细胞 (含2×105个)加入到96孔板中, 再加入终浓度0.05 g/L ConA刺激小鼠脾细胞, 48 h后用ELISA法检测各组脾细胞培养液中IFNγ、 TNFα、 IL12和IL4的含量。
1.2.3 脾细胞中CD4+、 CD8+淋巴细胞的分选 同1.2.2方法取出3组小鼠脾脏, 制成单细胞悬液, 用PBS洗2次, 然后每组加入FITC标记的抗小鼠CD4、 CD8 mAb, 避光作用60 min, 采用流式细胞术(FCM)进行CD4+、 CD8+淋巴细胞的分选试验。
1.2.4 脾细胞CD11c分子表达的检测 同上将3组小鼠脾细胞制成单细胞悬液, 用PBS洗2次, 分别加入FITC标记抗小鼠CD11c mAb, 避光作用60 min, 用FCM分析CD11c阳性细胞的比率。
1.2.5 肿瘤组织细胞表面分子的检测 于注射IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞后30 d, 取出3组小鼠肿瘤组织制成单细胞悬液, 用PBS洗2次, 然后每组分别加入FITC标记抗小鼠MHCⅠ类分子、 CD80 mAb及PE标记抗小鼠MHCⅡ类分子、 CD86 mAb, 避光作用60 min, 用FCM分析细胞表面待测分子的表达情况。
1.2.6 肿瘤组织中CD4+、 CD8+淋巴细胞浸润情况的检测 同上切取3组肿瘤组织, 100 g/L甲醛固定, 石蜡包埋组织做5 cm厚切片, 常规脱蜡、 水化, 加TritonX100修复暴露抗原(4℃过夜)。以100 mL/L山羊血清封闭非特异性结合位点(37℃ 30 min)后, 分别滴加兔抗鼠CD4、 CD8抗体(4℃过夜), 山羊抗兔IgG和SABC(37℃各孵育1 h)。用DAB显色后, 再以苏木素复染, 于显微镜下观察结果。
1.2.7 统计学分析 应用SPSS12.0软件对所有数据进行单因素方差分析(ONE WAYANOVA)统计学处理。P&<0.05为具有统计学意义。
2 结果
2.1 荷瘤小鼠体内致瘤性及肿瘤生长情况观察 津白Ⅱ号小鼠随机分为3组, 分别于右侧背部皮下注射0.1 mL的IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞, 结果表明, IL23基因转染组与空载体转染组及亲代细胞组在小鼠体内的成瘤率均为100%。但IL23基因转染组小鼠皮下结节生长速度明显慢于接种空载体转染组及亲代细胞组, 表明IL23基因转染的肿瘤细胞体内生长能力明显下降(图1)。
2.2 脾细胞分泌细胞因子的检测 皮下接种IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞后30 d的小鼠脾细胞在体外经MA891诱导后, 用ELISA法检测脾细胞培养上清中Th1类细胞因子IFNγ、 TNFα, Th1类细胞诱导因子IL12及Th3类细胞因子IL4的含量。结果显示, 接种IL23/MA891细胞的小鼠脾细胞可产生高水平的IFNγ(190.3±17.5)ng/L、 TNFα (137.5±8.4)ng/L和IL12(112.4±8.0)ng/L等Th1类及相关细胞因子, 与接种LXSN/MA891细胞(46.7±4.1, 59.7±5.6, 49±9.0)ng/L 和MA891细胞(40.3±2.7, 58.8±5.2, 51.6±9.6)ng/L 2组小鼠的脾细胞相比明显增加(n=6, P&<0.01); 而Th3类细胞因子IL4(69.6±13.8, 75.2±8.8, 65.2±10.0)ng/L的水平却无统计学意义(n=6, P&>0.05, 图2)。图2 接种细胞后30 d小鼠脾细胞细胞因子的分泌
2.3 脾细胞中CD4+、 CD8+淋巴细胞的分选 取皮下接种IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞后30 d的小鼠脾细胞制成单细胞悬液, FCM分选结果显示IL23/MA891组CD4+淋巴细胞及CD8+淋巴细胞比率(34.0±1.7, 14.6±0.6)% 均较LXSN/MA891(12.3±0.8, 9.1±0.5)%、 MA891(12.5±0.7%, 9.0±0.6)% 组明显增高(n=6, P&<0.01)。
2.4 脾细胞中CD11c阳性细胞比率的变化 接种IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞后30 d的小鼠脾细胞中CD11c阳性细胞(DC)表达的FCM检测显示: 接种IL23/MA891细胞组小鼠脾脏中, CD11c阳性细胞比率(21.4±1.6)%与接种LXSN/MA891和MA891细胞组小鼠脾脏相比CD11c阳性细胞比率(12.4±1.0, 11.6±0.6)% 有明显增高(n=6, P<0.01); 而接种LXSN/MA891和MA891细胞组小鼠脾脏中CD11c阳性细胞比率之间无统计学意义。
2.5 肿瘤组织中细胞表面分子表型的变化 经FCM分析, 皮下接种IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞后30 d, IL23/MA891组肿瘤组织细胞表面分子MHCⅠ、 MHCⅡ、 CD80、 CD86表达与接种MA891和LXSN/MA891细胞组相比较有明显的提高(P<0.01); MA891和LXSN/MA891组小鼠的肿瘤组织细胞表面分子表达无统计学意义(表1)。表1 FCM检测3组肿瘤细胞表面MHCⅠ、 MHCⅡ、 CD80和CD86分子的表达(MIF值)
2.6 肿瘤组织中CD4+、 CD8+淋巴细胞浸润情况的检测 免疫组化结果显示, 接种IL23/MA891细胞小鼠肿瘤组织中CD4+、 CD8+淋巴细胞浸润程度较接种MA891和LXSN/MA891细胞小鼠明显增加(图3)。
3 讨论
本研究发现, IL23基因转染组小鼠皮下结节生长速度明显慢于接种空载体转染组及未转染组, 表明IL23基因转染的肿瘤细胞体内生长能力显著下降。说明导入IL23基因的小鼠乳腺癌细胞分泌的IL23发挥了明显的抗肿瘤作用, 减低了肿瘤在活体内的侵袭能力, 降低了其生长速度。
本研究结果显示, 接种IL23/MA891细胞的小鼠与分别接种MA891细胞和LXSN/MA891细胞的小鼠相比较, 其脾细胞经MA891刺激后产生了较高水平的IFNγ、 TNFα和IL12, 而IL4的水平无明显变化。机体免疫功能的平衡主要由两类辅助性T细胞亚群Th1 和Th3产生的细胞因子决定的[4]。IFNγ和TNFα 是Th1细胞产生的细胞因子, IL12可诱导Th1细胞产生Th1类细胞因子, 在细胞免疫中发挥重要作用; 而IL4为Th3细胞产生的细胞因子, 在体液免疫中发挥重要作用。大量的动物实验及临床实验已证实IFN 具有较强的抗肿瘤和免疫调节作用, TNF 可直接造成肿瘤细胞的凋亡[5, 6]。IFNγ、 TNFα等在细胞因子如IL12等的抗肿瘤效应中发挥着重要作用[7]。另外, 免疫组化结果显示, 接种IL23/MA891细胞小鼠肿瘤组织中CD4+和CD8+淋巴细胞浸润较接种MA891和LXSN/MA891细胞小鼠明显增加; 接种IL23/MA891细胞小鼠脾细胞流式分选结果显示CD4+淋巴细胞及CD8+淋巴细胞比率较LXSN/MA891、 MA891组明显增高。说明IL23可能主要通过诱导宿主淋巴细胞产生Th1类细胞因子, 增强CD8+ T淋巴细胞细胞毒作用而发挥抗肿瘤作用。
树突状细胞(DC)是最重要的抗原提呈细胞, 当与T细胞相遇时, 可将抗原提呈给T细胞产生第一信号, 协同刺激分子为T细胞的活化提供第二信号, 使初始T细胞充分激活, 诱导CD8+T和CD4+T细胞免疫反应。IL23可以与小鼠DC结合, 诱导DC产生IFNγ, 提高DC的抗原提呈能力[8]。CD11c是小鼠DC的表面标志, 可用来分离和鉴定小鼠DC[9]。本研究中利用CD11c mAb对接种各组肿瘤细胞小鼠脾细胞中DC的分析结果显示, 接种肿瘤细胞后30 d时, 3组中IL23/MA891组小鼠脾细胞中的CD11c阳性细胞比率明显高于MA891细胞组和LXSN/MA891细胞组, 说明IL23可促进小鼠脾细胞中DC数量的增加。已有动物实验和临床实验证实DC在抗肿瘤免疫中发挥着重要作用[10], 因此, 说明IL23诱导荷瘤小鼠脾细胞DC数量的增加在IL23的抗肿瘤效应中发挥作用。另外, 皮下接种IL23/MA891、 LXSN/MA891和MA891细胞后30 d, IL23/MA891组肿瘤细胞表面分子MHCⅠ、 MHCⅡ、 CD80、 CD86表达与接种MA891和LXSN/MA891细胞组相比较有明显提高, 可见IL23可通过增加肿瘤的抗原性及抗原提呈的协同刺激作用, 增强细胞免疫功能, 防止肿瘤逃逸, 发挥抗肿瘤作用。
参考文献
[1] Bubenik J. MHC class I downregulation: tumour escape from immune surveillance[J]. Int J Oncol, 2004, 25(2): 487-491.
[2] 郝 群, 李大金.免疫系统衰老的研究进展[J]. 上海免疫学杂志, 2003, 23(1): 60-62.
[3] Oppmann B, Lesley R, Blom B, et al. Novel p19 protein engages IL12p40 to form a cytokine, IL23, with biological activities similar as well as distinct from IL12[J]. Immunity, 2000, 13(5): 715-725.
[4] Reome JB, ylind JC, Dutton RW, et al. Type 1 and type 2 tumor infiltrating efector cell subpopulations in progressive breast cancer[J]. Clin Immunol, 2004, 111(1): 69 -81.
[5] Matera P, Rozados VR, Gervasoni SI, et al. Th3/Th1 switch induced by a single low dose of cyclophosphamide in a rat metastatic lymphomamodel[J]. Cancer Immunol Immunother, 2002, 11(50): 588- 596.
[6] Aoki Y, Tsuneki I, Sasaki M, et al. Analysis of Th1 and Th3 cell by intracellular cytokine detection with flowcytometry in patients with ovariancancer[J]. Gynecol Obstet Invest, 2000, 50(3): 207- 211.
[7] Robertson MJ, Cameron C, Atkins MB, et al. Immunologic effects of interleukin 12 administered by bolus intravenous injection to patients with cancer[J]. Clin Cancer Res, 1999, 5(1): 9-16.
[8] Belladonna ML, Renauld JC, Bianchi R, et al. IL23 and IL12 have over lapping, but distinct, effects on murine dendritic cells[J]. J Immunol, 2002, 168(11): 5448-5454.
[9] Yang AS, Lattime EC. Tumorinduced interleukin 10 suppresses the ability of splenic dendritic cells to stimulate CD4 and CD8 Tcell responses[J]. Cancer Res, 2003, 63(9): 2150-2157.
[10] Chiyo M, Shimozato O, Iizasa T, et al. Antitumor effects produced by transduction of dendritic cellsderived heterodimeric cytokine genes in murine colon carcinoma cells[J]. Anticancer Res, 2004, 24(6): 3763- 3767.