作者:沈丽珍 施用晖 李 武 代国杰 郑舟怡 乐国伟
【摘要】 目的 观察注射链脲佐菌素 (STZ)小鼠血糖、活性氧族 (ROS)、抗氧化酶、胰岛素 (INS) 和生长抑素 (SS) 的变化,探讨ROS和SS在糖尿病(DM)发生过程中的作用。方法 昆明种小鼠腹腔注射STZ枸橼酸缓冲液,分别在注射后0、1、3、6、12和24 h测定血糖、INS及SS水平、ROS、超氧化物歧化酶 (SOD)、谷胱苷肽过氧化物酶 (GSHPx) 活力及丙二醛 (MDA)。结果 全血、胰腺、肝脏ROS在注射后即开始升高,分别在6 h、3 h和6 h到达峰值。血清、胰腺SS分别在6 h和3 h降至最低值。血清INS水平在6 h时显著高于各时间点。3 h血糖水平显著高于其他各时间点,6 h明显降低。血液、胰腺和肝脏GSHPx和SOD活力在注射后均显著降低,同时MDA含量则显著升高。相关性分析显示,全血、胰腺ROS和SS呈显著负相关,而全血ROS和血清INS则为显著正相关。结论 STZ产生大量ROS损伤SS表达分泌,使SS对胰腺B细胞保护作用减弱,进一步损害B细胞,INS分泌异常,血糖随之改变,ROS损伤SS分泌是STZ诱导产生DM的重要原因。
【关键词】 活性氧族;糖尿病;生长抑素;链脲佐菌素
链脲佐菌素(STZ)是从链霉素中分离出来的抗生素,由葡萄糖和甲基化氮源部分组成,结构与葡萄糖相似,能够通过葡萄糖转运载体2(GLUT2)转运进入细胞,因而对含有高水平GLUT2的胰腺B细胞更易产生毒性〔1〕。胰腺内抗氧化酶活性低,更容易受到自由基的攻击〔2〕,STZ诱发的活性氧族(ROS)在胰腺损伤中发挥着重要作用。生长抑素(SS)是一种调节性抑制肽,有广泛生物学活性,现在认为SS对许多疾病如糖尿病(DM)、肿瘤、帕金森病等的发生、发展及防治具有重要意义〔3,4〕。胰岛D细胞能够分泌具有抗氧化功能的SS,能抑胰岛素(INS)分泌,进一步减少糖代谢产生的自由基。认识SS在控制自由基的水平,防止胰岛氧化损伤中的作用,将有助于认识DM发生机制,为防治DM提出新的控制与治疗手段。本研究通过腹腔注射STZ后小鼠血液、胰腺SS、ROS以及血糖水平变化,研究SS在控制ROS水平、INS、血糖以及体内抗氧化活性中的作用。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 动物 清洁级昆明种小鼠,雄性,4~6周龄,体重14~19 g,同室分笼正常日粮饲养,自然光照,自由采食和饮水。环境温度控制在(23±2)℃,湿度60%。
1.1.2 试剂 STZ(Bio Basic Inc公司);辣根过氧化物酶(HRP)(北京拜尔迪生物公司);鲁米诺(苏州亚科化学有限公司);邻苯三酚(AR级)(中国医药集团上海化学试剂公司);INS、SS放射免疫试剂盒(北京华英生物技术公司);MDA试剂盒(南京建成生物工程研究所)。
1.1.3 主要仪器 血糖仪(美国琼森life scan);MPIB型多参数化学发光分析测试系统(西安瑞迈分析仪器公司);低温高速离心机(上海安亭科学仪器厂);超低温冷冻冰箱(美国INVETRO公司);Multiskan Mk3酶标仪(美国Thermo公司);UV1100型紫外分光光度计(北京瑞利科学仪器有限公司)。
1.2 分组与模型制备 昆明小鼠随机分成6组,每组10只,适应喂养1 w,禁食12 h后称重,每只小鼠以150 mg/kg体重单次腹腔注射0.1 ml新鲜配制的STZ枸橼酸缓冲液,分别在注射后0、1、3、6、12和24 h摘眼球取血,置肝素抗凝管中,立即加入抑肽酶混匀,离心取上清低温保存待测。迅速取出胰腺和肝脏,制备组织匀浆液,离心取上清-20℃保存待测。
1.3 观察指标和测定方法 琼森Life Scan血糖仪快速测定血糖;血、胰腺INS和SS用放射免疫法由北京华英生物技术公司测定;血、胰腺和肝脏ROS采用Luminol化学发光法测定;血和组织匀浆中SOD采用邻苯三酚自氧化法测定;GSHPx采用DTNB直接法测定;MDA含量按南京建成生物工程研究所测定试剂盒说明书进行。
1.4 统计学方法 采用Origin 7.0软件对ROS进行积分统计,Excel对实验资料进行统计和整理,结果以x±s表示,采用SPSS17.0 统计软件进行t检验。
2 结 果
2.1 小鼠血液、胰腺和肝脏ROS水平 注射STZ后全血ROS开始升高,于6 h处达到最高点,显著高于0 h水平(P&<0.01),随后降低,24 h内小鼠全血ROS水平呈现升高降低升高趋势。胰腺、肝脏ROS在注射后也逐渐上升,胰腺ROS水平在3 h后达到最高点,显著高于0 h水平(P&<0.01),之后出现降低,注射STZ 24 h后,ROS保持在注射前的150%。肝脏ROS水平在3 h时是0 h的142%(P&<0.01),并于6 h达最高值,注射24 h后ROS仍是注射前的158%。见表1。表1 注射STZ后小鼠血液、胰腺和肝脏ROS水平
2.2 小鼠SS水平 注射STZ后1 h时血清SS水平升高10%,但在3 h则降低12.6%(P&<0.05),6 h时显著降低到(12.94±1.79)pg/ml(P&<0.01),此后处于低水平状态。胰腺SS水平在1 h处显著高于0 h 17%(P&<0.01),而3 h后出现降低23.5%,6 h处有短暂的升高,12 h后处于低水平,见表2。表2 注射STZ后小鼠血液和胰腺SS水平
2.3 小鼠INS和血糖水平 在注射STZ短时间内小鼠血清INS有轻微降低,但差异不显著。6 h时血清INS显著升高(P&<0.01),随后逐渐下降。注射STZ 3 h后血糖,显著高于其他时间点水平(P&<0.01),但在6 h降到最低点,显著低于各时间点水平(P&<0.01),之后逐渐上升。血糖呈现升高降低升高的趋势,见表3。
2.4 小鼠血液、胰腺抗氧化指标变化 0 h血液GSHPx活力最高,注射STZ后其活性降低,6 h处降到最低值,显著低于其他时间点水平(P&<0.01)。0 h血清MDA含量最低,随STZ注射时间延长其含量渐渐升高,在6 h时达最高,与0 h比较,差异有统计学意义(P&<0.01)。胰腺GSHPx和SOD活力在注射STZ后均逐渐降低,于3 h处活力降至最低,与0 h比较差异有显著性(P&<0.01)。胰腺MDA含量在注射1 h后有所升高,3 h时达到显著水平(P&<0.01)。见表4。表3 注射STZ后小鼠INS和血糖变化表4 注射STZ后小鼠血液与胰腺抗氧化指标变化
2.5 小鼠肝脏抗氧化指标变化 肝脏GSHPx和SOD活力在0 h时均为最高,注射STZ后其活力逐渐降低,在6 h时降到活力最低点,与0 h相比差异显著(P&<0.01)。注射后MDA含量开始升高,3 h时达到显著水平(P&<0.01),并于6 h处达到最高值。见表5。
2.6 ROS、SS和INS的相关性分析 相关性分析结果显示,胰腺ROS与SS之间呈显著负相关(r=-0.544,P&<0.01)。全血ROS与血清SS之间呈显著负相关(r=-0.477,P&<0.01)。而全血ROS和血清INS之间则呈显著正相关(r=0.485,P&<0.01)。表5 注射STZ后不同时间点小鼠肝脏抗氧化指标变化
3 讨 论
氧化应激是机体在遭受各种有害刺激时,自由基产生和抗氧化防御之间的动态平衡被破坏,导致细胞损伤的过程。与氧化应激密切相关的主要为ROS。早期DM患者全膜抗氧化状态(TAS)明显降低,提示DM早期患者抗氧化防御系统功能即全面下降。Wilmm等〔5〕使用一种新型抗氧化剂Lazaroid,减少ROS的产生,在很大程度上缓解了胰岛B细胞的损伤。说明氧化应激与DM有关,ROS在DM发病机制中起作用。
STZ致DM的机制目前尚未完全清楚。一些研究表明,STZ能在B细胞内产生自由基,使用抗氧化剂可减轻由STZ引起的氧化应激〔2,6,7〕。Takasu等〔8〕提出过氧化物和羟自由基导致的DNA断裂在DM发展中有重要作用。大鼠胰腺体外实验证明STZ和四氧嘧啶 (ALX) 能刺激产生h3O2,进而使胰腺细胞DNA断裂,并且其产生自由基的量随药物浓度升高而升高。本研究证明,注射STZ后,首先在胰腺产生大量ROS,这与STZ选择性作用于胰腺的报道是一致的。同时,小鼠血液、胰腺和肝脏ROS水平都升高。INS提高肌肉和脂肪组织细胞膜葡萄糖载体表达与分泌,促进将葡萄糖转运入细胞,降低外周血糖,但促进葡萄糖进入肝脏与肌肉代谢过程中同时产生大量ROS。
ROS的增加改变了小鼠体内氧化还原状态的平衡,本研究小鼠血液GSHPx活力在注射STZ后逐渐降低,而MDA含量则开始升高,在血液ROS最高点时,GSHPx活力最低,而MDA含量最高。胰腺及肝脏GSHPx和SOD活力均有下降,分别在各自ROS水平达到最高时,其活力降到最低值,MDA含量则出现升高。结合ROS水平,说明STZ产生的大量ROS使小鼠抗氧化防御系统功能减弱,出现氧化应激,脂质过氧化产物增加。因此,STZ诱导DM的首先途径是产生大量ROS,氧化还原状态失衡,进而破坏胰岛细胞导致DM。
SS是一自身具有抗氧化活性,调节机体氧化还原状态的环状多肽类激素。SS及其类似物可影响体内许多激素的分泌。善宁可通过与SS受体结合,抑制INS分泌,对B细胞起到保护和修复的作用〔9〕。屠亚红等〔10〕用外源性注射SS和用半胱胺特异性耗竭内源性SS的方法,观察SS对STZ糖尿病小鼠血清INS的影响,结果表明外源性SS有预防STZ诱发小鼠低血清INS发生的作用,而胰腺组织中内源性SS也可能是对胰岛B细胞起保护作用的因素之一。整体动物试验及细胞水平研究均证明SS可通过增强细胞对ROS的清除能力而对胃黏膜细胞起保护作用。八肽生长抑素可减轻OH对孵育状态下人胃黏膜细胞的损伤,减轻细胞脂质过氧化程度〔11〕。结合ROS和SS的变化,可看出全血及胰腺ROS在注射后短时间内出现轻微上升时血清SS亦有所上升,随时间ROS继续升高,SS则开始出现下降,当ROS达到最高点时,其含量降到最低点。胰腺ROS和SS相关性分析显示,两者呈显著负相关,全血ROS和SS的相关性分析同样为显著负相关。实验室前期研究结果表明,一定范围内ROS可能是刺激SS分泌的信号。随高脂饲料喂养小鼠时间延长,ROS水平剧增,高水平ROS损害SS表达分泌系统,添加抗氧化剂显著降低ROS水平,提高SS表达。最初ROS的升高可作为一种刺激,引起SS分泌和释放,内源性SS在一定范围内能清除STZ诱导产生的ROS。但当ROS浓度过高时,对胰腺D细胞有损伤作用,导致SS分泌、释放减少,减弱清除胰腺内ROS能力和对B细胞保护作用,进而胰腺B细胞受到大量ROS攻击、破坏,最终导致DM的出现。另外,胰腺6 h处SS有短暂升高现象,和B细胞的破坏导致INS大量释放一样,可能为ROS破坏了部分D细胞,释放细胞内SS所致。
观察注射STZ后6个时间点的血糖和INS,可看出有三个明显变化的时相。注射后1 h,血糖略有升高,而血清INS略有降低,此时相可能为药物抑制INS释放所致,3 h血糖出现显著升高。血清INS在6 h的时候明显上升,血糖相应显著下降,呈低血糖相,可能为胰岛B细胞破坏释放大量INS所致。随后INS开始下降,血糖继而上升,B细胞破坏导致INS产生不足,此后血糖升高并维持在高水平即高血糖相。
综上所述,STZ诱导产生ROS,ROS损伤SS表达分泌系统,使SS分泌减少,氧化还原状态失衡,减弱SS对胰腺B细胞保护作用,进一步损害B细胞,INS异常分泌,加快血糖进入细胞,加强代谢而ROS增加,从而产生DM。
参考文献
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