【摘要】 目的:研究组蛋白HIST1h3AC和HIST1h3BC在培美曲塞诱导的胰腺癌耐药细胞株Puta8988中的基因和蛋白表达水平,以明确HIST1h3AC和HIST1h3BC基因与胰腺癌耐药的关系。方法:以两种剂量的培美曲塞诱导胰腺癌细胞株Puta8988,使其形成两个等级的获得性耐药细胞株Puta8988+、Puta8988++。采用qRTPCR和Western blotting方法分别检测HIST1h3AC和HIST1h3BC在耐药细胞株及其亲本(对照)中的基因和蛋白表达水平。结果:qRTPCR检测结果显示,组蛋白HIST1h3AC和HIST1h3BC基因在胰腺癌耐药株Puta8988+和Puta8988++中的表达水平显著上调(P&<0.05);Western blotting检测结果显示,组蛋白HIST1h3AC和HIST1h3BC在胰腺癌耐药株Puta8988+和Puta8988++中的蛋白表达水平也显著上调(P&<0.05)。结论:胰腺癌细胞株经培美曲塞诱导后,其组蛋白HIST1h3AC和HIST1h3BC在基因和蛋白表达水平上均出现上调,提示HIST1h3AC和HIST1h3BC基因可能与耐药有关。
【关键词】 HIST1h3AC; HIST1h3BC; 胰腺癌; Puta8988; 培美曲塞; 表达
[Abstract] Objective: To investigate the expression of HIST1h3AC and HIST1h3BC genes in pancreatic cancer cell line Puta8988 treated with pemetrexed, and to verify the relationship between the genes and pemetrexedresistance. Methods: Pancreatic cancer cell line Puta8988 was treated with two doses of pemetrexed to get Puta8988+ and Puta8988++ with pemetrexedresistance, and the expression levels of HIST1h3AC and HIST1h3BC and their genes in Puta8988, Puta8988+ and Puta8988++ were detected by qRTPCR and Western blotting respectively. Results: Results detected by qRTPCR showed that expression levels of HIST1h3AC and HIST1h3BC genes were significantly upregulated in Puta8988+ and Puta8988++(P&<0.05). Results detected by Western blotting showed that expression levels of HIST1h3AC and HIST1h3BC were also significantly upregulated in those cell lines with pemetrexedresistance(P&<0.05). Conclusion: Expressions of HIST1h3AC and HIST1h3BC and their genes in pancreatic cancer cell line Puta8988 treated with pemetrexed are significantly upregulated, which implies that these genes possibly plays a role in pemetrexedresistance of pancreatic cancer cell lines.
[Key words] HIST1h3AC; HIST1h3BC; pancreatic cancer; Puta8988; pemetrexed; expression
胰腺癌起病隐匿,手术切除率低,对传统放化疗不敏感,死亡发病比达98%,5年生存率&<6%[1-2],是威胁人类健康的“隐秘杀手”。近年来的研究表明,辅助化疗有比传统化疗更好的疗效,已被认为是与手术治疗同样重要的治疗方法。与此同时,多种针对胰腺癌的靶向药物也在不断被发现。然而,耐药现象的存在仍然是导致辅助化疗效果欠佳或失败的主要原因。揭示胰腺癌化疗的耐药机制,建立更有效的化疗方法已成为国内外研究的重点[3];而从分子生物学的层面来研究和寻找耐药基因,然后给予必要的干预,以提高辅助化疗疗效的研究已成为当前最为关注的热点[4]。已有的研究表明,胰腺癌耐药性与MDR1(multidrug resistance1)、MRP(multidrug resistance associated protein gene)、LRP(lung resis 2 tance protein)、Bcl2(Bcell lymphoma/leuke2)以及P53等基因有关,而这些基因的一个共同特点是与其他癌症的耐药性也有关[5]。这就提示我们可以借鉴其他癌症发现的耐药基因研究胰腺癌的耐药机制。有报道指出,组蛋白HIST1h3AC(Histone 1,h3ac)和HIST1h3BC(Histone 1,h3bc)基因与乳腺癌耐药性密切相关[6]。然而,它们是否在胰腺癌耐药细胞株中表达至今很少有报道。本实验针对胰腺癌耐药细胞株中HIST1h3AC和HIST1h3BC在基因和蛋白水平上的表达情况开展研究,以探讨它们与胰腺癌耐药的关系及其可能的分子机制,为研发对抗和逆转耐药的新方法提供新的靶点。
1 材料与方法
1.1 材料
人胰腺癌细胞株:采用由东南大学中心实验室保存的人胰腺癌细胞株Puta8988。主要试剂:DMEM高糖培养基、胰蛋白酶为美国GIBCO公司产品,胎牛血清为杭州四季青公司产品,TRIZOL细胞裂解液为美国Invitrogen公司产品,培美曲塞(pemetrexed)为法国礼来公司产品,HIST1h3AC单克隆抗体和HIST1h3BC多克隆抗体为美国Abnova公司产品,二抗(羊抗小鼠 IgGHRP)为南京凯基生物公司,PDVF膜为美国PALL公司产品,PCR引物由南京凯基生物公司合成。主要仪器:北京泰克生物技术有限公司Realtime PCR Master Mix(SYBR Green),日本Nikon公司倒置相差显微镜,美国BECKMAN公司高速冷冻离心机,美国BioRad公司电泳仪等。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养 胰腺癌细胞株Puta8988,以1/2 IC50浓度的培美曲塞作耐药诱导,形成耐药细胞株Puta8988+。将培美曲塞浓度增加1倍再次作耐药诱导,形成耐药细胞株Puta8988++。Puta8988+、Puta8988++培养在含10%胎牛血清的DMEM培养基中,37 ℃、5%CO2条件下培养,隔天换液,细胞长满单层后用2.5 g·L-1胰蛋白酶消化传代。
1.2.2 实时荧光逆转录聚合酶链反应(qRTPCR) 细胞总RNA提取按照Trizol试剂盒说明进行。逆转录合成cDNA的反应总体积为20 μl,RT的反应条件是:37 ℃温育30 min后,升温至65 ℃加热5 min,然后4 ℃冷却5 min,瞬时离心。先在37 ℃保温1 h,然后70 ℃保温15 min。反应产物行下一步扩增或-20 ℃保存。根据Gene Bank中HIST1h3AC、HIST1h3BC的cDNA序列用Primer 5.0设计特异性扩增引物,见表1。
采用25 μl总反应体系:2×RTmix 12.5 μl;模板(cDNA稀释10倍) 1 μl;引物5 pmol·μl-1 mix 1 μl;双蒸水10.5 μl扩增条件:95 ℃ 5 min,94 ℃ 15 s、表1 PCR所用的引物序列及扩增产物大小60 ℃ 30 s,45个循环。一个样本做3个复孔,在96孔板中上样定量检测。
1.2.3 Western blotting 分别从培养好的细胞株提取细胞总蛋白进行定量,细胞总蛋白量为70 μg,将3组细胞的蛋白质常规PAGE凝胶电泳并转移至PVDF膜,用5%脱脂奶粉封闭液中室温封闭1 h后加入封闭液和一抗HIST1h3AC抗体(1∶500),HIST1h3BC抗体(1∶500)。在4 ℃下摇床摇荡孵育过夜。PBST漂洗滤膜4次,每次10 min。将膜与HRP结合的二抗(辣根过氧化酶标记抗体, 二抗用封闭液稀释1∶5 000)室温下摇荡孵育1 h,然后用PBST充分洗膜,漂洗4次,每次10 min。暗室中迅速将膜蛋白贴在X线胶片上曝光,直至出现最佳条带。
1.3 统计学处理
实验数据以±s表示,采用Prism软件包分析,组间比较用t检验,P&<0.05为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 qRTPCR检测HIST1h3AC和HIST1h3BC基因在不同耐药处理胰腺癌细胞株中的表达水平
以目标基因拷贝数与βactin拷贝数之比乘以100为HIST1h3AC和HIST1h3BC基因在不同耐药处理胰腺癌细胞株Puta8988中的相对表达水平,实时荧光PCR检测结果(图1)表明,1/2 IC50浓度培美曲塞诱导的耐药细胞株Puta8988+,其HIST1h3AC基因的相对表达水平调高,由其亲本Puta8988(对照)的0.340±0.070提高到1.577±0.276,上升幅度达4.64倍。如果培美曲塞的浓度加倍,Puta8988++中HIST1h3AC基因的相对表达水平进一步提高,达2.000±0.185,是对照的5.88倍,各处理间的差异均达到显著水平(P&<0.05)。HIST1h3BC基因在上述耐药细胞株及其亲本中的表达水平也有同样的趋势,但就其相对表达量而言,要比HIST1h3AC的低,在Puta8988、Puta8988+、Puta8988++中分別为0.027±0.003、0.153±0.023和0.623±0.048,在Puta8988+、Puta8988++中HIST1h3BC的mRNA相对表达水平分别比对照(Puta8988)调高5.67倍和23.07倍,各处理间的差异也达到了显著水平(P&<0.05)。
2.2 Western Blotting检测HIST1h3AC和HIST1h3BC蛋白在不同耐药处理胰腺癌细胞株中的表达水平
Western Blotting检测结果(图2)表明,当胰腺癌细胞株Puta8988经过耐药诱导后, HIST1h3AC蛋白和HIST1h3BC蛋白的表达都上调,并随培美曲塞药物剂量的加大而上升。以目标蛋白灰度值与βactin蛋白灰度值之比为其相对表达水平,分析(图3)表明,耐药细胞株Puta8988+和Puta8988++中HIST1h3AC蛋白相对表达水平要比其对照(Puta8988)分别提高54.35%和87.43%,处理间的差异显著(P&<0.05)。而HIST1h3BC蛋白对耐药处理的响应更加明显,其在Puta8988+和Puta8988++中的相对表达水平比对照分别提高189.26%和774.85%,处理间的差异达极显著(P&<0.01)。
3 讨 论
有报道组蛋白HIST1h3AC、HIST1h3BC与多种肿瘤的发生、发展及临床结局有关[7]。近期的大量研究又发现,HIST1h3AC和HIST1h3BC或其他组蛋白的基因在许多种肿瘤耐药细胞株中出现过度表达。Mengual等[8]在膀胱癌耐药细胞的基因芯片中发现HIST1h3AC基因表达上调2.5倍。Prssinen等[9]在乳腺癌磷酸化细胞的基因芯片中发现HIST1h3AC基因表达上调1.8倍。Silvia等[10]在非小细胞肺癌耐药细胞的基因芯片中发现HIST1h3BC基因表达上调3.2倍。本研究结果也显示,胰腺癌细胞株通过培美曲塞药物诱导后,HIST1h3AC、HIST1h3BC基因和蛋白的表达水平都表现出上调,并随诱导药物使用剂量的增加而提高。这就表明HIST1h3AC、HIST1h3BC基因与胰腺癌的耐药性可能存在联系,这两个基因也可能是多个癌症的耐药基因。从HIST1h3AC和HIST1h3BC的基因表达情况来看,无论是在对照细胞株(Puta8988)中,还是在耐药细胞株(Puta8988+、Puta8988++)中,HIST1h3AC基因的相对表达水平都要高于HIST1h3BC(图1),但由于对照细胞株HIST1h3BC基因的相对表达水平仅是HIST1h3AC的7.94%,如果与各自的对照相比较,耐药细胞株的HIST1h3BC基因调高幅度要明显高于HIST1h3AC,这就提示HIST1h3BC基因表达对耐药性更加敏感。这种敏感性也能通过蛋白的表达体现。图3显示,对照细胞株的HIST1h3BC蛋白相对表达水平仅为HIST1h3AC的0.63倍,而耐药细胞株Puta8988+和Puta8988++的HIST1h3BC蛋白相对表达水平分别是HIST1h3AC的1.18倍和2.94倍。
目前有关胰腺癌HIST1h3AC和HIST1h3BC基因耐药机制的研究成果还未见报道,但可以预测,它们可能是胰腺癌耐药产生的重要基因。组蛋白HIST1是染色质构成单元核小体的基本结构单位。HIST1h3AC和HIST1h3BC分别编码于组蛋白h3A和h3B家族[11],位于染色体6p21.3和6p22.1,是构成组蛋白的基本核蛋白,主要负责染色体内核小体的装配工作,被认为是和细胞复制及分裂有关的一组结构。本研究采用的培美曲塞是2004年经美国食品与药品管理局批准应用于临床的化疗新药,其作用靶点包括3个:第一靶点是嘧啶和嘌呤合成中的多种酶[12],包括胸甘酸合酶,使dUMP转变成dTMP发生障碍,从而抑制DNA合成;第二靶点是二氢叶酸还原酶,阻止二氢叶酸还原成四氢叶酸,从而使一碳单位代谢形成障碍;第三靶点是甘氨酰胺核苷酸转甲酰酶,使嘌呤核苷酸从头合成障碍。HIST1h3AC、HIST1h3BC基因和蛋白表达水平在耐药细胞株中调高,可能与培美曲塞的第一靶点有关。胰腺癌细胞染色体遭培美曲塞损伤后,通过调高HIST1h3AC、HIST1h3BC基因和蛋白表达水平促进染色体的功能恢复,从而降低药效。因此,进一步深入研究HIST1h3AC和HIST1h3BC基因对培美曲塞的耐药机理不仅具有重要的科学价值,而且具有很重要的临床意义。
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