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【关键词】 基因转染
关键词: bax基因;癌,肝细胞;基因转染;基因表达
摘 要:目的 建立稳定高表达Bax蛋白的肝癌细胞. 方法 用脂质体介导的基因转染法分别将含人bax cDNA的pBK-bax和pBK-CMV空载体质粒导入人肝癌细胞系HCC-9204细胞中.经G-418筛选获得细胞克隆.ABC法和图像定量分析检测Bax蛋白在细胞中的表达情况.HE染色观察细胞形态学变化.TUNEL法检测细胞凋亡发生情况. 结果 转染后用G-418筛选2wk,获得了细胞克隆.转染pBK-bax细胞的Bax蛋白表达强度明显强于转染pBK-CMV或未转染的HCC-9204细胞(P&<0.05),而转染pBK-CMV的细胞与未转染的HCC-9204细胞的Bax蛋白表达强度未见明显差异.pBK-bax转染的细胞有的可见细胞固缩、变圆、浓染和“出泡”等凋亡形态学变化,并且其TUNEL指数明显高于转染pBK-CMV或未转染的HCC-9204细胞(P&<0.05). 结论 获得了稳定高表达Bax蛋白的肝癌细胞.bax基因转染的HCC-9204细胞凋亡率明显增高.
Abstract:AIM To elucidate the adjusting function and op-erating mechanism of proapoptotic gene bax in the apoptotic process of hepatocellular carcinoma(HCC),and to establish the HCC cells which can express Bax protein stably and high┐ly.METHODS The plasmid of bacteriophague expression vector pBK-bax,which contains human bax cDNA,was ex-tracted,and identified with agarose gel electrophoresis after cut by restricted endonuclease EcoRⅠ.The plasmids of pBK-bax and empty vector pBK-CMV were transduced into a HCC cell line HCC-9204cells,which express Bax protein at a lower level,with LipofectAMINE Lipid gene transfection method.The positive cell clones,which had been transduced with objective gene,were obtained with G-418screening.The expression of Bax protein in the HCC-9204cells prior to and after transfection with pBK-bax or pBK-CMV empty vec-tor,was detected with immunocytochemical ABC method and image-quantitative analysis.The morphological changes of the cells were observed after HE staining.The apoptotic situ-ation was detected with TUNEL method.RESULTS The agarose gel electrophoresis indicated that,there was bax cDNA fragment,which was about576bp after cut by re-stricted EcoRⅠ.The G-418-resistant cell clones,which had been transfected with pBK-bax or pBK-CMV empty vector,were obtained by screening with G-418for2wk continually after transfection.The image-quantitative analysis after im-munocytochemical staining indicated that,there was stronger expression of Bax protein in the cells which had been trans-fected with pBK-bax than those which had been transfected with pBK-CMV empty vector or untransfected HCC-9204cells.There wasn’t significant difference between pBK-bax or pBK-CMV transfected HCC-9204cells on the expression of Bax protein.There were morphological changes of apopto-sis,such as cell pyknosis,circled,densely stained and bub-bling,in some pBK-bax transfected cells,and its TUNEL in-dex was significantly higher than that of the cells transfected with pBK-CMV empty vector or untransfected.CONCLU┐SION Bax gene could be transfected into HCC-9204cells successfully,and the HCC cells that can express Bax protein stably and highly could be obtained.The apoptotic rate of bax gene transfected HCC-9204cells increases significantly.
0 引言
Bax是目前细胞凋亡研究中较为热门的促凋亡基因,属于细胞凋亡相关基因bcl-2家族.在多数情况下转染bax基因不仅能够使细胞生长受到抑制,而且能够促进多种因素诱导的多种细胞的凋亡[1-4] .关于转染bax基因对原发性肝细胞癌(简称肝癌)细胞凋亡的影响及其作用机制尚未见报道.免疫细胞化学检测显示,HCC-9204是一株Bax蛋白表达相对较低的肝癌细胞系.我们用基因转染法把bax基因导入肝癌细胞系HCC-9204细胞中,建立稳定高表达Bax蛋白的肝癌细胞,并对其凋亡现象进行观察,为研究有关bax基因在肝癌细胞凋亡调控中的作用奠定基础.
1 材料和方法
1.1 材料 插有正向人bax cDNA(576bp)的pBK-bax噬菌粒表达载体菌种为本校免疫学教研室刘飞博士惠赠.pBK-CMV空载体质粒为上海第二医科大学司晓辉博士惠赠.人肝癌细胞系HCC-9204为本室建立,用含有150mL・L-1 新生牛血清的RPMI1640培养液在50mL・L-1 CO2 条件下培养.Wi-zard Plus质粒提取和纯化试剂盒、限制性内切酶EcoRⅠ购自美国Promega公司.脂质体介导的基因转染试剂盒LipofectAMINE和G-418为美国Gibco公司产品.鼠抗人Bax蛋白mAb为美国Oncogene公司产品.免疫组化ABC试剂盒为美国Vector公司产品.末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记(TUNEL)法凋亡检测试剂盒为德国Boehringer Mannheim公司产品.
1.2 方法
1.2.1 pBK-bax载体的鉴定 pBK-bax菌种经铺板活化后挑取单克隆菌株置于含卡那霉素的LB培养基中,37℃振摇12h.用Wizard Plus试剂盒提取并纯化pBK-bax质粒,经EcoRⅠ酶切后8g・L-1 琼脂糖凝胶电泳鉴定.
1.2.2 基因转染和细胞克隆筛选 参照Gibco公司的试剂盒说明书,用脂质体载体LipofectAMINE将pBK-bax质粒转染入HCC-9204细胞,同时设转染pBK-CMV空载体质粒和不转染的HCC-9204细胞对照.3d后换用含有500mg・L-1 G-418的新鲜培养液继续培养,2~3wk后当未转染的HCC-9204细胞对照全部死亡、并且转染的细胞大多数死亡时,收集G-418抗性的细胞克隆,扩大培养.
1.2.3 免疫细胞化学染色和图像定量分析 ①染色方法:在盖玻片上生长至对数期的细胞用950mL・L-1 乙醇固定15min.分别经3mL・L-1 h3 O2 和3mL・L-1 Triton X-100处理后,加正常羊血清,37℃,30min.加鼠抗人Bax mAb,37℃,1h.加生物素化的羊抗鼠IgG mAb,37℃,30min.加ABC复合 物,37℃,30min.除加正常羊血清一步外,上述各步之间均用PBS洗.用新鲜配制的DAB显色10min.脱水,透明,封片;②图像分析:采用HPIAS-1000彩色病理图文分析系统中的免疫组化定量分析窗口.每张切片在显示器上随机选取40×视野(向同一方向移动切片,不重复,不重叠),计数约500个细胞.由计算机给出所测单个细胞的吸光度(A)值.计算各例细胞的A值x ±s.数据经两组均数的t检验.
1.2.4 细胞凋亡检测 HE染色按常规方法进行.TUNEL法检测:①细胞爬片晾干并经40g・L-1 多聚甲醛固定30min;②置4℃穿透液(含1g・L-1 Triton X-100的1g・L-1 枸橼酸钠)中2min;③焦碳酸二乙酯(DEPC)水洗,静置30min;④用FITC标记的核苷酸和脱氧核苷酸末端转移酶组成的TUNEL反应液37℃染色60min,以PBS代替TUNEL反应液作为阴性对照,荧光显微镜观察.计算TUNEL指数(阳性细胞数除以总细胞数).数据经χ2 检验.
2 结果
2.1 pBK┐bax载体的鉴定 琼脂糖凝胶电泳显示,pBK-bax质粒约为5.1×103 bp,经EcoRⅠ酶切后约为4.5×103 bp(切开的pBK-CMV载体)和576bp(切开的bax cDNA)的两条基因片段(Fig1).
图1 8g・L-1 琼脂糖凝胶电泳鉴定pBK-bax质粒 略
2.2 细胞克隆筛选 在含有G-418的培养液中,未转染的HCC-9204细胞对照在转染后1wk内全部死亡,2wk时转染细胞组的大部分细胞死亡,并可见散在生长的G-418抗性细胞克隆(Fig2).
2.3 免疫细胞化学染色图像定量分析 Bax染色阳性信号为棕黄色,位于HCC-9204细胞的细胞质.转染pBK-bax,转染pBK-CMV空载体和未转染的HCC-9204细胞的A值分别为0.28±0.11,0.18±0.07和0.17±0.05.转染pBK-bax与转染pBK-CMV空载体或未转染组之间均具有显著性差异(P&<0.05,Fig3).转染pBK-CMV空载体与未转染组之间未见明显差异(P&>0.05).
图2 - 图4 略
2.4 细胞凋亡检测
2.4.1 HE染色 pBK-bax转染的细胞多数未见明显的形态学变化,可见有的细胞出现固缩、变圆、浓染和“出泡”等凋亡形态学变化(Fig4).
2.4.2 TUNEL法检测 转染pBK-bax,转染pBK-CMV空载体和未转染的HCC-9204细胞的TUNEL指数分别为0.23±0.08,0.12±0.05和0.09±0.03.转染pBK-bax与转染pBK-CMV空载体或未转染组之间均具有显著性差异(P&<0.05).转染pBK-CMV空载体与未转染组之间未见明显差异(P&>0.05).
3 讨论
Bax是1993年首先在人和小鼠的B淋巴细胞中发现的一种Mr 21×103 的蛋白质.Bax与Bcl-2的作用相反,能够促进细胞凋亡.Bax蛋白能够通过bcl-2家族成员共有的BH1,Bh3或BH3区域与另一个Bax分子形成同源二聚体,或与Bcl-2,Bcl-xL,Mcl-1,A1等分子形成异源二聚体.当Bax主要以同源二聚体的形式存在时,细胞容易自发凋亡或在外界因素诱导下发生凋亡[5] .Bax蛋白在多数肿瘤组织和细胞中具有较高程度的表达[6,7] .关于Bax蛋白在肝癌中的表达情况尚有争议.有报道认为肝癌组织的Bax蛋白表达水平明显低于肝硬化组织和癌旁肝组织,也有的作者认为肝癌组织的Bax蛋白表达程度明显高于癌旁肝组织和正常肝组织,目前获得共识的是肝癌中一般均有一定程度的Bax蛋白表达[8-10] ,说明bax基因在肝癌细胞凋亡中可能具有一定的调节作用.虽然多数报道认为,向细胞内转入bax基因可诱发许多细胞的自发凋亡,并且能够促进放射线或化疗药物等多种因素诱导的多种细胞的凋亡[1-4] .但是也有学者认为,有的情况下bax不但不能促进细胞凋亡,反而抑制某些细胞的凋亡[11] .说明bax在不同细胞的凋亡调控中的作用有所差异,还有其他因素参与bax对细胞凋亡的调节过程,其发生机制还不清楚.我们采用的pBK-bax表达载体是通过把bax cDNA片段克隆在pBK-CMV噬菌粒表达载体的EcoRⅠ酶切位点上构建而成[5] .pBK-CMV具有分别用于真核和原核表达的两种启动子,能够使其携带的外源基因在真核细胞和原核细胞中均可表达.pBK-CMV载体还含有可表达抗氨基甙类抗生素(Geneticin或G-418)蛋白的neo基因.将含有目的基因的pBK-CMV质粒转染入细胞后用G-418持续筛选,未转入目的基因的细胞被杀死,转入了目的基因并稳定表达目的蛋白的细胞因具有G-418抗性而呈克隆状生长,可获得成功地转染了目的基因的细胞克隆.脂质体是内脂质双分子层组成的环状封闭囊泡,它可以和DNA形成脂类-DNA复合物,该复合物能够以内吞的方式进入细胞,从而使目的基因转入细胞.以LipofectAMINE为代表的脂质体介导的基因转染产品,是目前常用的高效率基因转移方法[12] .本实验中,用G-418(500mg・L-1 )连续筛选2wk后获得了转入bax基因的细胞克隆.免疫细胞化学染色图像定量分析结果显示,转入bax基因的细胞对Bax蛋白的表达明显强于转染pBK-CMV空载体或未转染的HCC-9204细胞,而转染pBK-CMV空载体的细胞与未转染的HCC-9204细胞的Bax蛋白表达强度未见明显差异.说明成功地把bax基因转染到Bax蛋白表达水平相对较低的HCC-9204肝癌细胞中,建立了稳定高表达Bax蛋白的肝癌细胞模型.转染bax基因后细胞的TUNEL指数明显增高,虽然转染bax基因后只有少数HCC-9204细胞出现了固缩、浓染和“出泡”等凋亡形态学变化,总的说来细胞形态学变化不很明显,仍可说明bax基因转染能够使HCC-9204细胞凋亡趋势增强.本实验为进一步应用此高表达Bax蛋白的肝癌细胞进行bax基因在肝癌细胞凋亡调控中的作用及其机制的研究,以及探讨bax基因在肝癌基因治疗中的意义奠定了实验基础.
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关于Bax蛋白稳定高表达肝癌细胞的建立及其凋亡
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