作者:邵伟 袁晓波 王智昊 赵学忠
【摘要】 目的 观察西洋参叶二醇组皂苷(PQDS)对增殖的血管平滑肌细胞(VSMC)的干预作用,探讨PQDS干预VSMC的增殖作用及机制。方法 组织贴块法培养大鼠胸主动脉VSMC,用AngII诱导VSMC增殖。随机分为:空白对照组、AngⅡ模型组、AngⅡ+PQDS 100、50、25 mg/L不同剂量组。用MTT法、流式细胞术观察PQDS对细胞增殖、细胞周期、增殖指数的影响。结果 PQDS可减低VSMC的增殖能力,将增殖的VSMC抑制在G0/G1期。结论 PQDS能抑制VSMC增殖,其机制可能与将增殖的VSMC抑制在G0/G1期有关。
【关键词】 西洋参叶二醇组皂苷;血管平滑肌细胞;血管紧张素II
冠状动脉粥样硬化(AS)的主要病理变化是血管平滑肌细胞(VSMC)的增殖〔1,2〕。诱导VSMC增殖因素有很多,其中较重要的因素为血管紧张素Ⅱ(AngⅡ)。AngⅡ是肾素血管紧张素系统(RAS)中重要的生物活性肽,经过一系列细胞信号转导可诱导细胞增殖〔3〕。西洋参叶二醇组皂苷(PQDS)是五加科人参属植物,有抗心肌缺血、缩小心肌梗死面积的作用〔4〕。目前尚未有文献报道PQDS对VSMC增殖的影响,本文就PQDS对VSMC增殖的干预作用进行研究。
1 材料与方法
1.1 试剂及材料
Wistar大鼠3只,雄性,120~150 g。PQDS粉末、AngⅡ(Sigma公司),胎牛血清FBS、RPMI1640培养基、Trizol(Gibco公司),兔抗大鼠平滑肌肌动蛋白(αSMA)(美国Lab vision公司),SP抗兔试剂盒、DAB显色试剂盒(中杉金桥生物工程有限公司),MTT、碘化丙锭、RNA酶(Sigma分装)。
1.2 VSMC的培养及鉴定
用组织贴块法进行中层VSMC培养,当细胞铺满培养瓶底80%以上时,传代培养,取第3~6代培养物,经兔抗大鼠αSMA免疫组化染色鉴定,阳性细胞>98%,证实培养的是VSMC,实验用5~10代VSMC。
1.3 分组
将细胞随机分为5组,空白对照组:正常VSMC组;AngⅡ模型组:AngⅡ 10-7 mol/L,PQDS高剂量组(PQDS1):PQDS 100 mg/L+ AngⅡ 10-7 mol/L; PQDS中剂量组(PQDS2):PQDS 50 mg/L+ AngⅡ 10-7 mol/L;PQDS低剂量组(PQDS3):PQDS 25 mg/L+ AngⅡ 10-7 mol/L;以上各组细胞置于含10%胎牛血清的RPMI1640培养液中,于5%CO2、37℃、饱和湿度培养箱中培养。
1.4 MTT法检测细胞增殖能力
用0.25%胰蛋白酶消化单层培养细胞,用含10%胎牛血清的RPMI1640培养液配成单细胞悬液,以每孔103~104个细胞接种于96孔培养板中,每孔体积为200 μl。将培养板放入CO2孵箱中37℃、5% CO2及饱和湿度条件下,培养24 h,待培养细胞贴壁后,吸去培养液。按照上述分组中的给药,各组细胞在10%胎牛血清的RPMI1640培养液,于CO2孵箱中37℃、5%CO2及饱和湿度条件下,培养48 h。弃去培养液,每孔加入MTT溶液20 μl,37℃继续培养4 h后终止培养,吸弃培养上清液,每孔加150 μl二甲基亚枫(DMSO),振荡10 min。然后选择490 nm波长,在酶标仪上测定各孔吸光度值,记录结果。
1.5 流式细胞仪检测细胞周期及增殖指数
将细胞接种在培养瓶中,培养24 h,后换无血清RPMI1640培养液作用24 h,使细胞同步化于G0期。按前述分组方案加药处理后,继续培养48 h,然后收集细胞,离心1 000 r/min×5 min,弃上清。用4℃预冷的70%冷乙醇固定18 h,之后调整细胞浓度为1×106细胞/ml,PI染色37℃孵育30 min后进行流式分析,应用ModFit LT3.0软件分析细胞周期中各期细胞所占总细胞的百分率;计算细胞增殖指数(PI),PI=(S+G2/M)/(G0/G1+S+G2/M)。
1.6 统计学处理
采用SPSS软件进行统计处理,所有计量数据以x±s表示,采用单因素方差分析(ANOVA)、SNK检验进行差异的统计学处理。
2 结 果
2.1 VSMC的鉴定
用倒置相差显微镜和SMA免疫组化染色,对VSMC进行鉴定。细胞培养3~5 d后,用相差显微镜观察可见少量细胞自组织块边缘游离出来,细胞呈梭形或长梭形排列,然后细胞呈放射性生长,长轴与组织块边缘垂直,多为两极,胞浆均匀,可见圆形细胞核及分裂相。至培养10 d左右出现局部成束的细胞平行排列,部分区域细胞重叠,部分区域高低起伏呈“峰、谷”状生长。SMA染色发现>98%的细胞染色呈阳性,即细胞浆内呈现棕黄色反应,胞核不着色,表明细胞含有SMA,证明培养的细胞为VSMC。见图1。
2.2 PQDS对VSMC增殖能力的干预
AngⅡ模型组OD值(0.862 5±0.06)比空白对照组(0.791 3±0.04)明显升高(P<0.05),提示AngⅡ可促进VSMC的增殖,造模成功。PQDS高、中剂量组OD值(0.773 8±0.05,0.807 5±0.03)比AngⅡ模型组均显著降低(P<0.05),PQDS低剂量组(0.812 5±0.06)有下降趋势,但是没有统计学意义(P>0.05),提示PQDS能够抑制VSMC增殖。
2.3 PQDS 对VSMC的细胞周期及PI的干预
AngⅡ模型组较空白对照组G0/G1期VSMC百分率明显减少(P<0.05),S期、G2/M期VSMC百分率显著增加(P<0.05),增殖指数明显升高(P<0.05)。提示AngⅡ可以促进VSMC从G1/G0期向S期转化,诱导VSMC增殖,造模成功。PQDS药物组较AngⅡ模型组G0/G1期的VSMC百分率均显著增加(P<0.05);S期的VSMC百分率、增殖指数均显著减少(P<0.05);PQDS高、中剂量组G2/M期VSMC百分率显著降低(P<0.05),低剂量组G2/M期百分率降低,但没有明显差异(P>0.05)。上述结果显示PQDS干预AngⅡ诱导的VSMC增殖,主要将细胞抑制在G1/G0期,见表1。表1 PQDS对细胞周期及增殖指数的影响(略)
3 讨 论
目前临床上抑制VSMC增殖的药物有钙离子拮抗剂、β受体阻断剂、血管紧张素转换酶抑制剂、免疫抑制剂雷帕霉素、降脂药普罗布考等〔5〕,但抑制VSMC增殖的中药开发得较少。中药是祖国医药的神奇宝藏,在中医整体理论的指导下,可发挥多靶点、多成分协同作用的优势,疗效显著、价格低廉、毒副作用小。因此,开发抑制VSMC增殖的安全有效的中药及探讨抑制VSMC增殖的机制有重要意义。
AngⅡ是肾素血管紧张素系统中最重要的生物活性肽,不仅是血管活性物质引起机体血流动力学改变,而且通过自分泌、旁分泌刺激VSMC增殖〔6〕。本实验用AngⅡ诱导VSMC增殖,MTT法观察到AngⅡ模型组OD值比空白对照组明显增高,说明AngⅡ促进VSMC增殖,表明实验造模成功。本文通过流式细胞仪技术,发现AngⅡ 使G0/G1期的VSMC百分率明显减少,S期、G2/M期的VSMC百分率明显增加。证实AngⅡ促使VSMC从G0/G1期进入到S期、G2/M期,诱导细胞增殖。
西洋参茎叶皂苷(PQS)系五加科人参属植物,包括PQDS和三醇组皂苷等。研究证明PQDS可增加急性心肌梗死犬心肌血流量,降低冠脉阻力,明显降低心肌耗氧量、心肌氧摄取率及心肌耗氧指数〔7〕,可增加小鼠心肌 Rb摄取率,增加心肌营养性血流量〔8〕,可明显缩小心肌梗死面积,减少血清中肌酸磷酸激酶(CPK)及乳酸脱氢酶(LDH) 活性〔9〕 。本实验证明PQDS对VSMC增殖有抑制作用。PQDS组OD值明显比AngⅡ组减低,说明PQDS可抑制细胞增殖。PQDS各组可增加G0/G1期VSMC的百分率,减少S期、G2/M期VSMC的百分率,减少增殖指数,阻断细胞由G0/G1期向DNA合成的S期、G2/M期转化。说明PQDS可抑制VSMC的增殖,可将VSMC细胞抑制在G0/G1期,进而证明PQDS通过抑制VSMC增殖而起到对AS的防治作用。
参考文献
1 Campbell JH, Campbell GR. Culture techniques and their applications to studies of vascular smooth muscle〔J〕. Clin Sci, 1993;85:50113.
2 Locher R, Emmanuele L, Paolo M,et al.Green tea polyphenols inhibit human vascular smooth muscle cell proliferation stimulated by native lowdensity lipoprotein〔J〕.Eur J Pharmacol, 2002;(434):17.
3 Owens GK.Regulation of differentiation of vascular smooth muscle〔J〕. Physiol Rev,1995;75(7):487517.
4 Mallat Z, Gojova A, MarchiolFournigault C,et al. Inhibition of transforming growth factorβ signaling accelerates atherosclerosis and induces an unstable plaque phenotype in mice〔J〕. Circ Res, 2001;89:9304.
5 Liu XH, Shen J, Zhan R,et al. Proteomic analysis of homocysteine induced proliferation of cultured neonatal rat vascular smooth muscle cells〔J〕. Biochim Biophys Acta, 2009;(1794):17784.
6 Lee B,Lee EJ, Kim D,et al. Inhibition of proliferation and migration by piceatannol in vascular smooth muscle cells〔J〕. Toxicology in Vitro, 2009;23:128491.
7 刘尚裕,睢大员,于小风,等.西洋参叶 20S原人参二醇组皂苷对急性心肌梗死犬血流动力学和氧代谢的影响〔J〕. 中国药学杂志,2001;36(1):259.
8 翟丽杰,于小风,曲绍春,等. 西洋参叶 20s原人参二醇组皂苷对小鼠心肌营养性血流量的影响〔J〕.人参研究,2004;4:24.
9 武淑芳,睢大员,于晓凤,等.西洋参叶 20s原人参二醇组皂苷抗实验性心肌缺血作用及其机制〔J〕.中国药理学杂志,2002;37(2):1003.