作者:刘朋飞 朱磊 李响 孙一夫 石毅 丛登立 王浩天 周余来
【摘要】 目的 探索结肠癌colo205细胞系对exosomes的分泌功能,并分析热休克作用对表面蛋白CD44v6表达量的影响。方法 采用超速离心法分离colo205细胞分泌的exosomes和热休克处理后colo205细胞分泌的exosomes(Heat shocked exosomes,HSExo),经220 nm微孔滤膜过滤纯化后,在透射电镜下观察其形态,并用SDSPAGE方法分析细胞与exosomes的蛋白组成,Western Blot检测表面CD44v6的表达情况。结果 经透射电镜观察,正常exosomes与HSExo形态基本相似,均为圆形或椭圆形膜性囊泡,直径大多在30~100 nm之间,且经热休克处理的colo205细胞及其分泌的HSExo,在CD44v6表达量上较正常colo205细胞及exosomes显著上调(P&<0.05)。结论 结肠癌colo205细胞系可分泌exosomes,且超速离心结合滤膜过滤的分离纯化方法切实可行;热休克作用可使CD44v6表达上调,说明HSExo较exosomes可能在肿瘤免疫治疗方面有更重要的应用价值。
【关键词】 结肠癌;exosomes;CD44v6;肿瘤免疫
外脂体是由细胞多囊体形成的一种膜性小囊泡,其来源十分广泛,其特异功能与来源细胞密切相关:外脂体携带着许多种独特的蛋白,如黏附蛋白,热休克蛋白等,在信号传导中起重要作用。作为一种免疫治疗的新手段,外脂体可以应用于肿瘤治疗。CD44v6是CD44 的一种拼接变异体,其表达可改变肿瘤细胞表面细胞黏附分子的构成和功能,有助于肿瘤细胞获得转移潜能,起到介导细胞间黏附、参与信号传递等作用,并与肿瘤的预后密切相关。目前,结肠癌外脂体肿瘤疫苗的研究才刚刚起步,主要是从LoVo、LS174T等细胞系中分离外脂体〔1,2〕,对其肿瘤免疫功能有较多的研究,但对结肠癌细胞分泌的外脂体表面相关蛋白的研究相对较少,尤其对其表面CD44v6的检测至今在国内外未见报道。因此,本课题组拟采用超速离心法从结肠癌细胞系中分离外脂体,对其表面分子CD44v6的表达水平进行检测,并分析热休克作用对CD44v6表达量的影响,为结肠癌亚细胞疫苗的研究及应用提供一定的理论依据。
1 资料与方法
1.1 材料 RPMI1640培养基、胎牛血清均购自美国Gibco公司,胰蛋白酶、对钠十二烷基硫酸盐(SDS)均购自美国Sigma公司,丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、预染蛋白Marker、均购自北京鼎国生物技术有限责任公司,硝酸纤维素转印膜购自美国PALL公司,鼠抗人CD44v6单克隆抗体、辣根过氧化物酶(HPR)标记山羊抗小鼠IgG均购自北京中杉金桥生物技术有限公司,二喹啉甲酸(BCA)蛋白浓度测定试剂盒、超敏化学发光(ECL)试剂盒购自碧云天生物技术研究所,人结肠癌colo205细胞株由吉林大学药学院生物工程实验中心提供。JEM2000EX透射电子显微镜购自日本电子公司、OptimaTM LE80K 低温超速离心机购自美国Beckman Coulter公司,Olympus IX70倒置显微镜购自日本Olympus公司。
1.2 结肠癌细胞的培养和热休克处理 实验选用结肠癌Colo205细胞株,用含10%胎牛血清的RPMI1640培养液于37℃、5% CO2条件下进行常规原代培养,待细胞长满培养瓶底80%后,拟提取exosomes,将培养细胞用不含小牛血清的RPMI1640洗涤2次,并继续培养48 h,台酚蓝染色检测细胞活力(细胞活力应大于97%)。此后,细胞于43℃孵育2 h,再于37℃恢复4 h〔3〕,倒置显微镜下观察细胞状态变化。
1.3 热休克源性exosomes(Heat shocked exosomes,HSExo)和非热休克源性exosomes的提取及纯化〔4,5〕 收集结肠癌细胞培养上清液,依次经300 r/min离心5 min、1 200 r/min离心20 min和6 000 r/min离心30 min,去除上清液中的细胞碎片等颗粒后,再以100 000 r/min离心60 min,收集沉淀,用磷酸盐缓冲液(PBS)洗1次。弃上清液,加入20 μl PBS重悬沉淀即为exosomes。-80℃冻存备用,使用前用0.22 μm滤膜过滤纯化。
1.4 电镜观察分析 取5 μl exosomes和HSExo,滴于载样铜网上,滤纸吸干液体,在滴加2%磷钨酸染液,负染1 min,待白炽灯烤干后约10 min,用透射电镜观察并照相。
1.5 结肠癌细胞及exosomes表面蛋白的分离 取经热休克处理和未处理的结肠癌细胞和相应的exosomes,分别放入细胞裂解液中,与冰上放置1 h,制得溶解物〔1〕。于100℃处理10 min,进行蛋白质变性,用二喹啉甲酸(BCA)法检测蛋白浓度。
1.6 Exosomes表面蛋白CD44v6的检测 设正常colo205细胞组、热休克处理的细胞组、正常外脂体组和热休克外脂体组,各组设3个复孔,经蛋白浓度检测后,各组以等量蛋白上样,进行8% SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)。电泳后将凝胶中的蛋白质通过湿法电转移方法,转移到硝酸纤维素膜上,并用含5%脱脂牛奶的Tris缓冲盐溶液(TBS)封闭硝酸纤维素膜,37℃作用3 h,将鼠抗人CD44v6单抗用含5%脱脂牛奶的TBS以1∶1 000稀释,膜与一抗置于封闭塑料袋内,4℃过夜。用TBS洗膜3次,再与辣根过氧化酶标记的羊抗鼠IgG 37℃下结合1 h,用TBS充分洗膜3次,经ECL化学发光试剂作用显色后,于暗盒内曝光,X光片显影定影后分析实验结果。
1.7 统计学分析 用Quantity one v4.62图像分析软件进行分析,结果以x±s表示,组内采用t检验。
2 结 果
2.1 热休克colo205细胞的观察 未经热休克处理的colo205细胞大多处于贴壁生长状态,少量悬浮生长;热休克处理之后悬浮细胞明显增多,但镜下未见形态学改变,见图1。图1 正常和热休克处理的colo205细胞(×200)
2.2 结肠癌colo205细胞源exosomes和HSexo的电镜观察 透射电镜下可见exosomes和HSexo大小不一,直径基本在30~100 nm之间,个别较大,二者形态基本相似,无明显差别,均为圆形或椭圆形膜性囊泡,并且在局部有相互聚集的倾向,见图2。
2.3 SDSPAGE结果 从SDSPAGE结果可见,在220 kD与105 kD之间,各样品组均在一定位置出现条带,但两个细胞组与两个exosomes组的条带位置有较大差异,而针对细胞组和exosomes组的组内比较条带位置差异并不显著。CD44v6的分子量约为190 kD,电泳结果显示在此区域有蛋白条带存在(1组为正常colo205细胞,2组为热休克colo205细胞,3组为正常外脂体,4组为热休克外脂体)。见图3。图2 exosomes和HSExo阳性图片(×100 000)图3 SDSPAGE结果
2.4 Western印迹结果分析 正常colo205细胞、热休克处理的细胞、exosomes和HSexo 4组经显影定影后均可见清洗条带。见图4。用Quantity one v4.62图像分析软件对Western印迹结果进行分析,结果显示经热休克处理后,CD44v6在细胞及exosomes上均出现了表达上调的现象(P&<0.05)。CD44v6阳性表达在colo205组为4.91±0.26,明显低于热休克colo205组(5.48±0.12);在exosomes组为5.05±0.24,明显低于HSexo组(5.80±0.15)(均P&<0.05)。图4 Western印迹结果
3 讨 论
肿瘤来源的exosomes(Tumor Exosomes,TEX),在形态学、密度以及一些膜标志物的表达上与抗原提成细胞(APCs)来源的exosomes相似〔5〕。TEX中存在肿瘤抗原运载系统以及与细胞靶向性有关的蛋白(CD9),这表明exosomes是一种抗原传递系统,能将肿瘤抗原转移到APCs。另外,TEX中含有许多肿瘤细胞所共有的共同抗原,TEX能将其转移到DC,导致交叉性呈递的CTL反应〔6〕。热休克反应是机体受到高温、缺氧、重金属离子、紫外线照射等理化因素的作用后,所产生的一种保护机体免受损伤的应激反应。热休克蛋白是在热休克反应作用下,启动热休克蛋白基因选择性合成的一组高度保守的蛋白质分子家族。近年来研究发现,人类肿瘤细胞中存在热休克反应,与肿瘤的生长、增殖及凋亡密切相关,表明热休克处理结肠癌细胞的方法,使细胞某些蛋白的表达上调,TEX中相应的蛋白含量也随之增加〔1〕;另外,热休克处理可以在一定程度上提高TEX的产量〔7〕。在本实验中,CD44v6表达上调的现象与相关研究一致,但并未发现热休克作用可提高结肠癌源TEX的产量,所以认为:不同细胞系的热休克反应往往有所区别,作用方式的差异常导致作用结果不尽一致,热休克处理不一定提高每种细胞系exosomes的产量。热休克作用会对exosomes产生影响,但作用机制还需进一步探索与研究。
参考文献
1 Chen W,Wang J,Shao C,et al.Efficient induction of antitumor T cell immunity by exosomes derived from heatshocked lymphoma cells〔J〕.Eur J Immunol,2006;36(6):1598607.
2 Yang S,Wang HP,Wang XY,et al.Expression of CD44V6 in parotid pleomorphic adenoma and carcinoma expleomorphic adenoma〔J〕.Expert Opin Investig Drugs,2010;19(1):1018.
3 刘 婷,华 川.树突状细胞抗肿瘤免疫的研究进展〔J〕.重庆医学,2009;38(16):20902.
4 Li XB,Zhang ZR,Schluesener HJ,et al.Role of exosomes in immune regulation〔J〕.J Cell Mol Med,2006;10(2):36475.
5 Hegmans JP,Bard MP,Hemmes A,et al.Proteomic analysis of exosomes secreted by human mesothelioma cells〔J〕.Am J Pathol,2004;164(5):180715.
6 Xie Y,Bai O,Zhang H,et al.Tumor necrosis factor geneengineered J558 tumor cellreleased exosomes stimulate tumor antigen P1A specific CD8+ CTL responses and antitumor immunity〔J〕.Cancer Biother Radiopharm,2010;25(1):218.
7 杨 麟,沈 宜,李 静,等.热休克小鼠肝癌细胞(h32)源Exosomes的制备及其蛋白组成的初步研究〔J〕.重庆医科大学学报,2008;33(6):66972.