作者:孟凡岩,沈传来,郭薇,缪凤琴,谢维,张建琼
【摘要】 目的: 获得大量CEA694702β2微球蛋白(β2m)融合蛋白,并制备HLACEA694702复合体。方法: 通过引物设计在β2m基因的5′端引入CEA694702序列和Linker序列,并将目的基因克隆到质粒pET28a中,在BL21(DE3)中表达。CEA694702β2m和HLA重链蛋白用金属螯合亲和层析法进行纯化,并经稀释复性法复性。制备的HLACEA694702复合体用PEG20000浓缩,应用ELISA鉴定其构象,并用尺寸排阻色谱纯化和鉴定。结果: HLA重链蛋白和CEA694702β2m蛋白经金属螯合亲和层析法纯化后纯度提高。ELISA鉴定结果表明稀释复性后HLACEA694702复合体形成了正确的构象。利用尺寸排阻色谱对HLACEA694702复合体成功地进行了纯化。结论: 利用CEA694702β2m融合蛋白成功制备出HLACEA694702复合体,为HLACEA694702四聚体的制备奠定了基础。
【关键词】 β2微球蛋白; 癌胚抗原; 稀释复性法; HLA肽复合体
癌胚抗原(carcinoembryonic antigen, CEA)是一种相对分子质量为180 000~200 000的多糖蛋白复合物,属于免疫球蛋白超家族分子,介导细胞黏附功能,也是重要的肿瘤标志物之一,在结直肠癌、肺癌、胰腺癌、胃癌、乳腺癌、肝癌及其它恶性肿瘤患者的血清中有不同程度的高表达[1]。抗原肽CEA694702由9个氨基酸组成,为HLAA*0201限制性的短肽[2],目前对此抗原肽特异性T细胞的数量和功能研究较少[3]。本研究采用CEA694702和β2微球蛋白(β2microglobulin,β2m)融合表达的策略构建CEA694702β2m融合蛋白,并和HLA重链(heavy chain, HC)复性成HLACEA694702复合体分子,为制备HLACEA694702四聚体,进一步用于抗肿瘤免疫的研究奠定基础。
1 材料和方法
1.1 材料
pET28a质粒、大肠杆菌DH5α、BL21(DE3)为本实验室保存;限制性内切酶、T4连接酶及高保真 DNA聚合酶均为TaKaRa公司产品,Western blot显影底物及BCA蛋白定量试剂盒均为Pierce公司产品,鼠抗人β2m单克隆抗体为Santa Cruz公司产品,W6/32抗体由美国Dr.Ferrone惠赠,HRP标记的羊抗鼠IgG抗体为Sigma公司产品;NiNTA为QIAGEN公司产品,Superdex 75 prep grade为Amersham Biosciences AB公司产品。
1.2 方法
1.2.1 CEA694702β2m重组质粒的构建和鉴定 以我们构建的pET28aβ2m重组质粒[4]为模板用两轮PCR的方法扩增出CEA694702β2m融合基因。第1轮所用上游引物为5′GGAGGTGGTGGTGGCGGATCAGGAGGCTCAGGAG
GTTCAGGAGGCATCCAGCGTACTCCAAAGATT3′,下游引物为5′CAACTCGAGCATGTCTCGATCCCACTTA
AC3′,下划线标示为Xho Ⅰ酶切位点。第2轮所用上游引物为5′GGCCCATGGGCGTACTAGTAGGCGTAGC
CCTAATCGGAGGTGGTGGTGGCGGA3′,下划线标示为Nco Ⅰ酶切位点,下游引物同第1轮。
质粒载体pET28a和PCR产物分别用Nco Ⅰ和Xho Ⅰ酶切,连接后转化入大肠杆菌DH5α感受态细胞。将转化后的DH5α涂布于含硫酸卡那霉素的LB培养基平板,置37 ℃ 培养过夜。挑取克隆并在LB液体培养基中培养,然后抽提质粒。重组质粒用Nco Ⅰ和Xho Ⅰ双酶切结合测序进行鉴定。
1.2.2 CEA694702β2m和HC包涵体蛋白的制备 将鉴定正确的重组质粒pET28aCEA694702β2m转化入BL21(DE3)中。挑取克隆,37 ℃培养至OD600 nm值为 0.6~0.8时,加入0.1 mmol·L-1 IPTG后于37 ℃诱导3 h。离心收集菌体,用Buffer A(50 mmol·L-1 Na3PO4、300 mmol·L-1 NaCl,pH7.0)重悬,超声破菌后用Buffer B(50 mmol·L-1 Na3PO4、300 mmol·L-1 NaCl、0.6 mmol·L-1脱氧胆酸钠、1% Triton X100,pH7.0)洗涤包涵体沉淀。最后沉淀重悬于Buffer C(100 mmol·L-1 Nah3PO4、10 mmol·L-1 Tris、8 mol·L-1 urea,pH8.0)中,室温轻缓搅拌,直至沉淀溶解。离心收集上清,分装后置-70 ℃保存备用。含pET28aHC重组质粒的BL21(DE3)菌为以前实验室所备[5],HC包涵体的制备过程同上。
1.2.3 Western blot鉴定CEA694702β2m蛋白 制备的CEA694702β2m包涵体蛋白用Western blot鉴定其表达是否正确,方法是:CEA694702β2m蛋白经SDSPAGE后转移至PVDF膜上,加入3% BSAPBS封闭液,4 ℃封闭过夜。将封闭液倒掉,加入鼠抗人β2m单抗于室温孵育1 h。洗涤后加入HRP标记的羊抗鼠IgG抗体,室温孵育1 h。洗涤后在膜上滴加DAB显色。
1.2.4 HC和CEA694702β2m蛋白的亲和纯化 利用金属螯合亲和层析(immobilized metal ion affinity chromatography, IMAC)纯化HC和CEA694702β2m蛋白,方法是:分别将HC和CEA694702β2m蛋白与2 ml NiNTA在室温混合30 min,然后装入空色谱柱中,用Buffer C洗至吸光度稳定。然后分别用Buffer D、E和F洗脱蛋白,其中Buffer D、E和F成分同Buffer C,pH分别为6.3、5.9和4.5。收集各洗脱成分并进行电泳。
1.2.5 HLACEA694702复合体的制备 将纯化后的HC(3 μmol·L-1)和CEA694-702β2m(6 μmol·L-1)分3次加入到100 ml复性缓冲液(100 mmol·L-1 Tris、2 mmol·L-1 EDTA、400 mmol·L-1 L精氨酸、5 mmol·L-1还原型谷胱甘肽、0.5 mmol·L-1氧化型谷胱甘肽和0.2 mmol·L-1 PMSF)中,于10 ℃搅拌48~72 h进行复性。复性后经PEG 20000浓缩,用Buffer G(20 mmol·L-1 Tris、150 mmol·L-1 NaCl,pH8.0)进行透析。
1.2.6 ELISA鉴定HLACEA694702复合体的构象 浓缩并透析的复性蛋白进行SDSPAGE,用软件根据灰度值计算HC和CEA694702β2m蛋白的比例,然后用ELISA鉴定HLACEA694702复合体的构象,方法是:将复性蛋白和对照(未复性的HC和CEA694702β2m蛋白,其比例同复性蛋白)包被在96孔酶标板中,用含2% BSA的PBS于4 ℃封闭2 h。加入W6/32于4 ℃孵育2 h,洗涤后加入HRP标记的羊抗鼠IgG抗体,4 ℃孵育2 h。洗涤后加入底物A液和B液显色后用2 mol·L-1 h3SO4终止,最后用酶标仪于495 nm处读取OD值。
1.2.7 尺寸排阻色谱纯化并鉴定HLACEA694702复合体 尺寸排阻色谱Superdex 75(柱长70 cm,柱内径1.0 cm)用Buffer G平衡,然后将浓缩并透析的蛋白样品加到色谱柱上端,用Buffer G洗脱,流速为0.3 ml·min-1,收集洗脱成分并进行电泳。
2 结 果
2.1 CEA694702β2m重组质粒的构建和鉴定
如图1A所示,CEA694702β2m基因从N端到C端依次包含有:抗原肽CEA694702序列、Linker序列、β2m基因和Histag序列,全长396 bp。pET28aCEA694702β2m重组质粒构建后经Xho Ⅰ和Nco Ⅰ双酶切后显示出预期长度的目的基因条带和载体DNA条带,说明目的基因被正确地插入质粒载体中(图1B);经测序分析,目的基因的序列与设计的序列完全一致。
将测序正确的重组质粒pET28aCEA694702β2m转化入BL21(DE3)中,经IPTG诱导后发现CEA694702β2m主要以包涵体的形式表达。SDSPAGE显示经提取和初步纯化后包涵体蛋白的条带位置与其相对分子质量(14 700)相符。Western blot结果表明,表达蛋白可以与抗人β2m的单克隆抗体结合,说明CEA694702β2m表达正确(图2)。
2.3 HC和CEA694702β2m融合蛋白的纯化
HLA重链蛋白HC和CEA694702β2m融合蛋白都带有Histag,所以可以用IMAC进行纯化。如图3所示,当溶液pH为4.5时洗脱出来的蛋白最多。据光密度扫描分析,纯化前的HC和CEA694702β2m的纯度分别约为72%和77%,纯化后这两种蛋白的纯度分别约为92%和86%。在单体CEA694702β2m融合蛋白(14 700)的上方有一条带,大小约为29 000,经IMAC纯化后仍存在,能被抗人β2m单抗结合(数据未展示),推测其为CEA694702β2m的二聚体,这可能是由Loading buffer中的β巯基乙醇还原能力下降引起的。CEA694702β2m的纯度计算包括此条带在内。
W6/32是一种针对HLA Ⅰ类分子构象的特异性单抗。将稀释复性法制备的HLACEA694702复合体,以及未复性的HLA重链和CEA694702β2m分别在ELISA实验中用W6/32检测,结果显示HLACEA694702复合体能与W6/32特异性结合,其OD值高于游离重链和CEA694702β2m对照组的OD值(图4)。
2.5 HLACEA694702复合体的纯化及鉴定
HLACEA694702复合体用尺寸排阻色谱Superdex 75进行纯化,得到3个蛋白洗脱峰(图5)。SDSPAGE显示,第1个洗脱峰中含有HC和CEA694702β2m蛋白,为MHCCEA694702复合体峰;第2个洗脱峰为CEA694702β2m蛋白;第3个洗脱峰没有蛋白,可能是溶液中其它成分,如EDTA等。
3 讨 论
HLA Ⅰ类分子由HC、β2m和抗原肽三部分组成。为了减少合成抗原肽的步骤并增加HLA肽复合体的稳定性,Uger等[6]建立了肽和β2m融合表达的方法,即肽和β2m利用一段8~15个氨基酸组成的Linker连接起来形成肽β2m融合蛋白。这种方法的优点是不用合成抗原肽,肽β2m融合蛋白可以在细菌中大量表达,构建成的MHC肽复合体分子产量高且更加稳定。实验表明,利用肽β2m融合蛋白和MHC重链蛋白复性成的MHC肽复合体分子,已成功地应用于抗原特异性T细胞的刺激增殖以及抗原特异性T细胞的检测[610]。我们以前的实验表明,MART12735β2m融合蛋白可以在宿主菌BL21中大量表达,并可以和HC结合复性成稳定的HLAMART12735复合体[11]。我们将CEA694702和β2m融合表达,同样制备出结构和构象正确的HLACEA694702复合体。
本实验选取质粒pET28a为CEA694702β2m的表达载体,一是因为pET28a质粒在我们以前的实验中可以大量表达我们的目的蛋白,包括HLA HC和β2m等;二是因为利用此质粒可以很方便地在目的蛋白羧基端加上6个组氨酸组成的Histag,能通过IMAC进行纯化,而蛋白纯度的提高有利于随后的复性[12];同时,Histag分子量很小,不会影响后继的复性过程。
CEA694702(GVLVGVALI)是从结肠癌细胞系SW1116和新鲜结肠癌组织中鉴定出来的CEA的一个T细胞表位[2]。有研究者[3]的实验表明,CEA694702与HLAA2分子的亲和力以及其免疫原性均较弱。目前对该段抗原肽研究仍较少,而HLACEA694702复合体的制备为进一步研究CEA694702特异性T细胞提供了方便。
参考文献
[1]李偶连,刘翠,童艳丽,等.癌胚抗原(CEA)检测技术的研究进展[J].现代医学仪器与应用,2008,20(2): 4851.
[2]SCHIRLE M,KEILHOLZ W,WEBER B,et al.Identification of tumorassociated MHC class Ⅰ ligands by a novel T cellindependent approach [J].Eur J Immunol,2000,30(8): 22162225.
[3]ALVES P M,VIATTE S,FAGERBERG T,et al.Immunogenicity of the carcinoembryonic antigen derived peptide 694 in HLAA2 healthy donors and colorectal carcinoma patients [J].Cancer Immunol Immunother,2007,56(11): 17951805.
[4]郭薇,张建琼,沈传来,等.两种β2m重组质粒的构建及其表达与纯化[J].免疫学杂志,2006,22(4): 460465.
[5]SHEN C,CHANG C C,ZHANG J,et al.Structural and functional characterization of peptidebeta2m fused HLAA2/MART1(2735) complexes[J].Biochem Biophys Res Commun,2006,342(1): 5765.
[6]UGER R A,BARBER B H.Creating CTL targets with epitopelinked beta 2microglobulin constructs [J].J Immunol,1998,160(4): 15981605.
[7]WHITE J,CRAWFORD F,FREMONT D,et al.Soluble class Ⅰ MHC with beta2microglobulin covalently linked peptides: specific binding to a T cell hybridoma [J].J Immunol,1999,162(5): 26712676.
[8]UGER R A,CHAN S M,BARBER B H.Covalent linkage to beta2microglobulin enhances the MHC stability and antigenicity of suboptimal CTL epitopes [J].J Immunol,1999,162(10): 60246028.
[9]TAFURO S,MEIER U C,DUNBAR P R,et al.Reconstitution of antigen presentation in HLA class Ⅰnegative cancer cells with peptidebeta2m fusion molecules [J].Eur J Immunol,2001,31(2): 440449.
[10]MARGALIT A,SHEIKHET H M,CARMI Y,et al.Induction of antitumor immunity by CTL epitopes genetically linked to membraneanchored beta2microglobulin [J].J Immunol,2006,176(1): 217224.
[11]SHEN C,CHANG C C,ZHANG J,et al.Construction of HLA/peptide tetramer with peptidelinked β2 microglobulin [J].J Microbiol Immunol,2004,2(4): 286294.
[12]LEONG S S J,MIDDELBERG A P J.The refolding of different afetoprotein variants [J].Protein Science,2006,15(9): 20402050.