作者:田维军 赵金伟 宋晓斌
【摘要】 目的 应用RNAi技术沉默胰腺癌细胞株中survivin基因对肿瘤细胞凋亡、细胞周期和增殖的变化。方法 靶向survivin的RNAi载体转染胰腺癌细胞,Western印迹检测基因沉默效果,MTT法和流式细胞术检测细胞增殖、凋亡及细胞周期。结果 survivin基因沉默效率可达85%;MTT检测显示,干扰组survivin沉默细胞增殖抑制与非特异性质粒对照组相比显著增高(P<0.01)。流式细胞术显示,干扰组细胞凋亡百分率显著高于非特异性质粒对照组(P<0.01);G2/M期显著高于非特异性质粒对照组(P<0.01或P<0.05),而S期则显著降低(P<0.05)。结论 survivin基因沉默可引起胰腺癌细胞周期阻滞,促进细胞凋亡,抑制细胞增殖。
【关键词】 RNAi;survivin;细胞凋亡;细胞周期;胰腺癌
胰腺癌的发生、发展以及侵袭、转移是多基因参与、多步骤发生的过程,其中生存素(survivin)是一类在胰腺癌的发生、发展中起非常重要作用的癌基因〔1〕,其参与细胞多种重要生物学过程,包括基因转录调控、胚胎发生、细胞分化、肿瘤形成和转移等〔1,2〕。survivin在胚胎期表达丰富,而在成熟组织中则表达极少或缺失,但在病理情况下,包括胰腺癌的很多恶性肿瘤组织中均发现有survivin的高水平表达,并且其表达量与肿瘤恶性程度及转移能力呈正相关〔1,3〕。survivin的过表达和激活不仅与预后不良密切相关,而且能影响肿瘤细胞对化疗药物的敏感性,是胰腺癌基因治疗的潜在靶点之一〔4,5〕。本研究选择survivin分子作为干扰靶点,检测沉默该基因后对胰腺癌细胞凋亡和细胞周期的影响,为进一步研究survivin基因在肿瘤细胞生物学特性及免疫抑制中的作用构建技术平台。
1 材料与方法
1.1 主要试剂
人胰腺癌细胞株PC3购自中国科学院上海生物研究所细胞库,以含10%胎牛血清(Hyclone公司)的DMEM(Gibco公司)培养基,37℃,5%CO2孵箱(SANYO)培养。转染试剂LipofectamineTM 2000(美国Gibco公司),ECL化学发光试剂盒(美国Pierce公司),小鼠抗人单克隆survivin抗体(Santa Cruz公司)。干扰质粒pGenesil2、非特异性siRNA(武汉市晶赛生物工程技术有限公司),pGensilsiRNAsurvivin质粒由本室构建。AnnexinV凋亡检测试剂盒购自美国BD公司。
1.2 细胞培养与细胞转染
转染前1 d将对数生长期的胰腺癌细胞株PC3以2×105个/孔接种于6孔培养板,细胞铺板在2 ml含血清、不含抗生素的DMEM培养基中,24 h内、细胞融合达40%~60%时进行转染,将siRNA LipofectamineTM2000复合体加到培养板中(转染方法按试剂盒说明书操作),转染体系为500 μl,siRNAs终浓度为100 nmol/L。
1.3 Western印迹检测基因沉默效果
收集细胞,用PBS缓冲液漂洗3次,加入200 μl 细胞裂解液混匀、冰浴30 min。15 000 r/min离心10 min,以Lowry′s 法行总蛋白定量分析。制备12%分离胶、5%积层胶,上样,在8 V/era电压条件下行SDS聚丙烯酰胺电泳,待溴酚蓝进入分离胶时,将电压提高到15 V/era。电泳结束后,将分离出的蛋白质转至硝酸纤维素膜上(Millipore,USA),5%脱脂奶粉的TBS溶液封闭2 h,鼠抗人单克隆一抗和βactin室温孵育2 h,二抗室温孵育1.5 h,ECL 试剂盒显色,拍照,比较各组灰度变化。分为siRNA干扰组、siRNA干扰对照组(用非特异siRNA LipofectamineTM 2000复合体转染)、空载体组(以空白载体复合体转染)、未转染对照组(以等量培养基处理)作为对照,观察各组干扰效果。
1.4 MTT法检测细胞增殖
将各组细胞以2 000个/孔的密度接种于96孔板,体积200 μl/孔。分别于转染后24、48、72 h进行MTT检测,酶标仪测定570 μm处OD值,连续测定3 d。每个时间点设5个复孔,根据吸光度值绘制曲线,比较各组细胞生长速度变化。分为siRNA干扰组和非特异性转染对照组。
1.5 流式细胞仪检测细胞周期和细胞凋亡
分别于转染后24、48、72 h收集细胞,冷PBS洗涤2次,-20℃预冷的70%乙醇固定48 h,1 200 r/min离心10 min弃上清,1 000 μl PBS重悬加10 mg/ml RNase 20 μl混匀,37℃水浴45 min,PBS洗Rnase,100 μl PBS重悬,100 μl PI 4℃避光染色1 h。流式细胞仪测定荧光强度,CellQuest分析软件进行细胞周期DNA含量分析,确定细胞周期分布。细胞凋亡的检测采用Annexin V细胞凋亡检测试剂盒,实验操作按说明书进行。每组细胞重复3个样本,分为siRNA干扰组和非特异性转染对照组。
1.6 统计学分析
数据均以x±s表示,采用统计软件SPSS 16.0分析。
2 结 果
2.1 Western印迹检测siRNA抑制survivin基因的效果
空载体组及siRNA干扰对照组survivin表达未受抑制,与未转染对照组比较无显著差异;而干扰组survivin表达与对照组相比则明显受到抑制,干扰效率达到85%以上,说明RNAi载体构建有效,能够有效地抑制转染细胞中survivin的表达(图1)。
2.2 survivin基因沉默对PC3细胞增殖的影响
MTT检测结果显示,PC3细胞行survivin基因干扰后0~72 h,较相同时间点对照组细胞吸光度A值降低;其中24、48 h干扰组PC3细胞吸光度A值明显低于对照组(P<0.05)。对照组PC3细胞24~72 h增殖抑制率分别为6.7%、11.6%和5.3%;干扰组PC3细胞24~72 h增殖抑制率分别为30.9%、29.8%和19.1%,对应时程组间增殖抑制率比较有显著差异(P<0.05)(图2)。
2.3 survivin基因沉默对PC3细胞凋亡和细胞周期的影响
流式细胞术结果显示,与对照组比较,各时点干扰组细胞在G1期前均出现显著的凋亡现象,以48 h最为显著,24、48、72 h凋亡细胞百分率分别为(33.67±4.24)%、(42.12±5.88)%、(38.37±7.91)%,与同时点对照组〔(2.01±0.42)%、(3.13±0.69)%、(3.74±0.9)%〕比较均具有显著性差异(P<0.01),提示特异性siRNA沉默survivin基因后的PC3细胞发生了显著的凋亡现象(图3)。与转染非特异性干扰质粒组比较,各个时点转染特异性干扰质粒组的G2/M细胞百分率均显著增大(P<0.05),以48 h最为显著(P<0.01),而S期细胞百分率明显降低,与对照组比较有明显差异(P<0.05),两组G0/G1期及细胞周期流式细胞术检测结果细胞百分率无显著差异,提示survivin基因沉默后胰腺癌PC3细胞阻滞于G2/M期(图4)。
3 讨 论
survivin是用EPR1的cDNA在人类基因组文库中杂交、筛选出的凋亡抑制蛋白(IAP)家族新成员〔1,6〕。survivin蛋白半衰期为30 min,其表达具有明显的周期依赖性。在G0/G1期检测不到survivin蛋白表达,S期表达量升高,G2/M期可升高40倍〔7〕。survivin表达也具有明显的组织选择性,生理状态下,在正常成熟组织中检测不到survivin表达,但其显著高表达于14~21周龄的胚胎组织中,因此推测survivin可能与组织器官的发育、成熟密切相关〔8〕。有研究证实,胸腺中survivin蛋白的高表达对于T细胞的分化、成熟有着重要意义。由于survivin蛋白在诸多肿瘤组织中(如肝癌、乳腺癌、白血病等)高表达,因此有人将survivin蛋白称作是肿瘤的通用抗原。由于survivin具有抑制凋亡、调控细胞周期、影响有丝分裂过程、促进血管生成等生物学作用,其高表达必然会对肿瘤细胞的生长与增殖产生影响——肿瘤细胞凋亡耐受、肿瘤血管的生成及向周围组织浸润能力的增强,并且随着survivin蛋白表达的增加,肿瘤细胞也表现一定的辐射耐受性及化学药物耐受性〔9,10〕。因此,survivin成为具有潜在价值的胰腺癌治疗的新靶点,沉默该基因可能对胰腺癌细胞生物学行为产生重要影响。
本研究MTT结果显示,survivin基因沉默后肿瘤细胞生长速度显著低于对照组细胞,说明survivin基因抑制直接导致了肿瘤增殖的抑制;流式细胞术结果显示,G2/M期细胞百分率显著高于对照组,S期细胞百分率显著低于对照组,说明survivin基因的沉默导致了细胞周期的阻滞,也进一步提示survivin可能参与胰腺癌细胞的周期调控;流式细胞术结果显示,G1期前有凋亡峰存在,且凋亡细胞百分数显著高于对照组,说明survivin基因沉默促进了胰腺癌细胞的凋亡,同时也提示survivin可能与胰腺癌细胞的凋亡密切相关。
参考文献
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