作者:黄忠仕,农嵩,谢海渊,张树球,李韬,李曙波
【摘要】 目的 观察二苯乙烯苷对Aβ2535诱导损伤的NG10815细胞生长、分化的影响。方法 以Aβ2535诱导NG10815细胞建立痴呆细胞模型后加入二苯乙烯苷培养,观察NG10815细胞的生长状态、存活率、突起率及突起平均长度。结果 与细胞模型组相比,二苯乙烯苷组能在一定程度上抑制Aβ2535对痴呆细胞的损伤作用,细胞生长状态良好,细胞存活率、突起率及突起平均长度与模型组比较均有显著性差异(P<0.05或P<0.01)。结论 二苯乙烯苷对Aβ2535诱导的NG10815细胞损伤具有保护作用。
【关键词】 二苯乙烯苷 老年性痴呆 β淀粉样蛋白 NG108 15细胞
【Abstract】 Objective To observe the effects of TSG on the growth and differentiation of NG10815 cells which were injured by Aβ2535.Methods NG10815 cells were cultured by Aβ2535 to establish cell model of Alzheimer's disease (AD) and then were cultured with TSG. The growth state,survival rate,neurite outgrowth and average length of outgrowth of NG10815 cells were observed.Results TSG could protect NG10815 cells from Aβ2535 damage. Compared with model group,the morphology, survival rate, neurite outgrowth and average length of outgrowth of NG10815 cells were significant difference from TSG group (P<0.05 or P<0.01).Conclusion TSG can protect the NG10815 cellular injury induced by Aβ2535.
【Key words】 2,3,5,4’tetrahydroxystilbene2OβDglycoside (TSG); Alzheimer's disease (AD);βAmyloid protein;NG10815 cells
二苯乙烯苷(2,3,5,4’四羟基二苯乙烯βD葡萄糖苷,TSG)是何首乌中的主要水溶性成分。近年来发现二苯乙烯苷对神经具有保护作用,其作用机制可能通过钙通道拮抗、抗氧化、胆碱脂酶抑制剂、调节细胞凋亡等途径而起作用的,因此对老年性痴呆(Alzheimer’s disease,AD)等神经退行性病变的防治具有很好的应用价值,可开发研制为治疗老年性痴呆的新药物[1~3]。本实验以Aβ2535诱导NG10815细胞建立痴呆细胞模型,并观察二苯乙烯苷对该模型的影响,现报道如下。
材料和方法
1.实验材料
①实验细胞株:NG10815细胞由广西中医学院钟振国教授惠赠。②试剂与仪器:主要试剂有二苯乙烯苷(由本教研室根据有关文献[4]提取);Aβ2535片段,cAMP,Penicillin G,硫酸链霉素,MTT(以上试剂由Sigma公司提供);HAT(次黄嘌呤/胸腺嘧啶核苷/氨甲喋呤)(Gibco 公司提供);胎牛血清(FBS),DMEM培养基(Hyclone公司提供)。主要仪器为CO2培养箱(Thermo Forma公司);倒置显微镜(南京江南光电股份有限公司);酶标仪(Metertech公司)。
2.培养方法
将细胞培养分为三组,①正常对照组:以5&ûS培养,不加Aβ2535;②模型组:以5&ûS培养,加Aβ2535;③TSG组:以5&ûS培养,加TSG(25、50、100 μmol/L)+Aβ2535。细胞增殖培养时,将NG10815细胞加入细胞增殖液(5&ûS+DMEM+1%HAT+1%双抗)悬浮细胞,离心,去上清液,分装至50 ml培养瓶,10%CO2、37℃培养。待细胞基本长满后,用细胞增殖液将细胞数稀释至约3万/ml,传到96孔培养板,每孔150 μl。继续培养1天后,去掉原培养液,更新增殖液,同时模型组、TSG组每孔加入Aβ2535至终浓度为5μΜ,继续培养48小时。将上述在50 ml培养瓶中长满的NG10815细胞用细胞分化液(5&ûS+1%HAT+1%双抗+1 mMcAMP+DMEM)稀释至约3万/ml,按每孔150 μl传到96孔培养板培养。分化液培养,同时模型组、TSG组每孔加入Aβ2535至终浓度为5 μΜ,继续培养48小时。
3.观察指标
①细胞形态学观察:每天用倒置显微镜对96孔培养板上各组细胞进行观察及拍照。②增殖或分化细胞存活率的检测:用MTT法对增殖或分化培养48小时后的细胞进行检测,可分别得到与以上两类细胞存活率相对应的OD值。吸弃待测细胞培养孔内培养液,加无血清DMEM液100 μl/孔,MTT液20 μl,于37℃、10%CO2条件下4小时,出现兰色结晶后,加SDSDMF100 μl/孔,于37℃、10%CO2条件下过夜,用酶标仪于λ=570 nm测OD值。③分化细胞突起率及其平均长度:置分化培养48小时后的分化细胞于倒置显微镜下,在培养板每孔上下左右中5个视野各拍片一张,然后在照片上测量轴突的长度和计算突起细胞的百分比,当细胞突起长度超过细胞的直径时为突起阳性细胞。
4.统计学方法
所有检测结果以均数±标准差(-±s)表示,采用SPSS11.0统计软件分析,组间均数比较采用t检验,显著性水平设在α=0.05。
结 果
1.细胞形态学观察结果 以含cAMP分化剂的培养液培养的细胞为分化相,不含cAMP的为增殖相。增殖相细胞的形态观察结果显示:对照组、TSG组细胞增长良好,胞浆均匀透亮,周围呈绒毛状及有短突起,细胞表面无明显斑点及沉积物;模型组细胞数量明显减少,胞浆较暗淡,有斑点、空泡,部分细胞变黑、聚集及死亡。分化相细胞的形态观察结果显示,各组细胞有较长的细胞突起,TSG组突起较模型组长,胞浆均匀透亮,模型组部分细胞有斑点,变黑或死亡。(见图1~6)。
2.各组增殖细胞存活率的比较
不加Aβ2535的正常对照组增殖最快,OD值最高;模型组增殖最慢,OD值最低。各组与正常对照组比较均有显著性差异(P<0.01);TSG各剂量组与模型组比较具有高度显著性差异(P<0.01)。见表1。表1 TSG对NG10815增殖细胞存活率的影响(略)注:与正常对照组比较:※P<0.05,※※P<0.01;与模型组比较:▲P<0.05,▲▲P<0.01。下同。
3.各组分化细胞存活率的比较
在分化剂cAMP的作用下,NG10815细胞将停止增殖而成为分化细胞,不含Aβ2535的正常对照组与原代播下的细胞数基本相同,可设其存活率为100%,实验结果显示含Aβ2535的各组细胞数均低于正常对照组。经组间t检验,TSG组的OD值与正常对照组比较具有高度显著性差异(P<0.01),与模型组比较亦具有高度显著性差异(P<0.01)。TSG各剂量组均能提高NG10815分化细胞的存活率。见表2。表2 TSG对NG10815分化细胞存活率的影响(略)
4.各组分化细胞的细胞突起率及突起平均长度比较
在分化剂cAMP的作用下,NG10815细胞将分化成为具有较长突起的分化细胞。各组细胞突起率中以不加Aβ2535的正常对照组最高。经组间t检验,TSG低、中剂量组的细胞突起率与正常对照组比较具有高度显著性差异(P<0.01),TSG各组与模型组比较具有高度显著性差异(P<0.01)。各组细胞突起平均长度比较,模型组明显短于其它组(P<0.01),TSG组与模型组比较,差异具有高度显著性(P<0.01)。见表3。表3 各组分化突起细胞占总细胞数的比率及突起平均长度比较(略)
讨 论
AD是一种原发性大脑神经退行性病变,为特有的中枢胆碱能神经元的大量死亡及丢失,伴有老年斑(SP)、神经纤维缠结(NFT)的形成、胆碱能神经细胞的损害、胆碱乙酰基转移酶(ChAT)水平下降和乙酰胆碱(Ach)递质合成的降低、突触蛋白I(Synapsin Ⅰ)水平下降、乙酰胆碱递质释放减少等特征[5~7]。NG10815细胞株为神经肿瘤细胞,由小鼠的神经胚胎母细胞瘤(Neuroblastoma,不能合成Ach)与大白鼠神经胶质细胞瘤(Glioma,能合成Ach,但不能释放)细胞杂交融合而成。这种杂交细胞能无限地继代繁殖,能合成并释放乙酰胆碱递质,具有神经细胞的突起以及正常神经细胞所具有的离子通道及酶等[8~10]。因此,具有胆碱能特性的NG10815细胞作为神经细胞模型,能较好地模拟AD的病理改变。Aβ是AD病患者大脑组织中老年斑的主要成分,它的活性部位在第25到35个的11个氨基酸片段。在NG10815细胞加入Aβ2535片段,可使细胞的形态学、死亡率、ChAT活性水平、SynapsinⅠ水平、Ach递质释放能力等与AD病理生理变化基本一致,因此,可用Aβ2535片段诱导NG10815神经细胞建立AD细胞模型[11~12]。
本实验结果显示:经5 μM Aβ2535作用48小时后,NG10815细胞形态结构及生长分化情况较正常培养的细胞发生了明显的变化。无论是增殖相还是分化相,细胞数量都明显减少,可见死亡、变黑、碎裂细胞;分化细胞的突起率降低,细胞突起平均长度也明显减少,表明Aβ2535片段可损伤体外培养的NG10815细胞,抑制细胞的生长和分化,并进一步诱导细胞死亡,而二苯乙烯苷组细胞增长良好,细胞透亮、均匀,表面无明显斑点及沉积物,细胞存活率、细胞突起率及细胞突起平均长度与模型组比较,均有显著性差异(P<0.05或P<0.01),表明二苯乙烯苷能在一定程度上抑制Aβ2535对细胞的损伤作用。有关其详细的保护作用机制,仍需通过进一步实验加以证实。
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