针对caspase3基因的RNA抑制对帕金森病细胞的抗凋亡作用

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论文字数:**** 论文编号:lw2023131486 日期:2026-04-04 来源:论文网

     作者:焦成国 陈加俊 宋冬晶 刘斌 黄燕苹

【摘要】   目的 探讨针对caspase3基因的 RNA抑制对帕金森病细胞的抗凋亡作用。方法 NGF诱导PC12细胞为类神经细胞。细胞随机分为对照组、模型组、GFP siRNA组、caspase3 siRNA组。对照组用完全培养液培养,其他3组细胞用6羟基多巴胺制作帕金森病细胞模型。于制作模型前24 h进行转染。造模后对caspase3及细胞凋亡率等指标进行检测。结果 (1)凋亡率:模型组细胞凋亡率〔(65.36±10.10)%〕明显高于对照组〔(5.00±1.00)%〕,有显著性差异(P<0.01);caspase3 siRNA组〔(19.00±4.08)%〕明显低于模型组(P<0.01)。(2)caspase3阳性率:模型组的caspase3阳性率〔(30.15±7.02)%〕明显高于对照组〔(8.20±2.45)%〕,差异有统计学意义(P<0.01);caspase3 siRNA 组caspase3阳性率〔(12.00±2.90)%〕明显低于模型组,差异有统计学意义(P<0.01)。结论 针对caspase3的 siRNA能有效地抑制帕金森病细胞凋亡,对6羟基多巴胺毒性作用下的神经细胞损伤有一定的保护作用。

【关键词】 帕金森病;RNA干扰;细胞凋亡


  近年来研究表明,细胞凋亡在帕金森病的病理机制中起重要作用。细胞凋亡涉及多种基因的复杂变化,其中凋亡促进基因caspase3与之关系密切〔1,2〕。基因干预可通过降低凋亡基因的表达而对细胞凋亡起到干预作用。本实验用6羟基多巴胺作用于NGF诱导后的PC12细胞,建立帕金森病细胞模型,用RNA干扰(RNAi)方法对Fas基因表达进行抑制,从而观察该方法对帕金森病细胞凋亡的影响。

  1 材料与方法

  1.1 细胞培养和诱导

  PC12细胞于完全培养液(RPMI1640+15%新生牛血清+青霉素)中培养,每3 d换液1次,5~6 d传代1次。取对数生长期PC12细胞,消化、离心后用完全培养基重悬,密度为105/ml,待80%汇合时吸去旧的培养液,加入新培养液备用。成熟的PC12细胞接种于含有50 ng/ml(约2 nmol/L)NGF的完全DMEM培养液中,使细胞密度达到2.5×104~10×104/cm3,每2~3 d换液1次。约1 w左右形成神经纤维,并且持续培养10 d,成为类神经细胞。

  1.2 实验分组及转染

  将细胞分为完全培养液对照组、模型组、GFP siRNA组(绿色荧光蛋白基因干扰RNA组);caspase3 siRNA 组。细胞转染试剂由大连宝生物公司提供。将细胞接种于24孔培养板,48 h后细胞融合达46%~60%进行转染。每组设10个样本,转染24 h后,进行6羟基多巴胺处理。

  1.3 建立帕金森病细胞模型

  取NGF诱导后的PC12细胞,消化、离心后用完全培养基重悬,密度为105/ml,待80%汇合时吸去旧的培养液,加入新培养液备用。将模型组、GFP siRNA组、caspase3 siRNA组细胞接种于162 cm2组织培养板中,待细胞贴壁成单层后,去上清,加入6羟基多巴胺培养24 h后进行caspase3表达及细胞凋亡相关检测。

  1.4 caspase3 siRNA序列

  caspase3正义链:5′ GATCCCGTACCACTTGACATTATCGTTCTTGATATCCGGAACGATAATGTC
AAGTGGTATTTTTTCCAAA3′,反义链:5′AGCTTTTGGAAAAA
ATACCACTTGACATTATCGTTCTCTCTTGAAGAACGATAATGTC
AAGTGGTACGG3′(试剂购自大连宝生物公司)。

  1.5 TUNEL法检测细胞凋亡

  脱氧核苷酸末端转移酶介导缺口末端标记法(TUNEL) 用细胞凋亡试剂盒(罗氏公司) 。细胞用40 g/L多聚甲醛固定24 h,常规石蜡包埋、切片。步骤按细胞凋亡试剂盒说明书进行。结果判断:细胞核被染成棕黄色为阳性。 每张切片在400倍高倍视野下随机取20个视野,计数阳性细胞数。

  1.6 流式细胞仪(FCM)分析

  3 ml培养液含 5×105个细胞培养于6孔板,PBS液洗涤2遍,再用预冷的体积分数70%乙醇固定,4℃过夜,采用PI (50 mg/L)染色分析亚二倍体峰,分析细胞凋亡比例。重复实验10次。

  1.7 FCM检测caspase3表达

  取细胞悬液(约1×106个/ml),低速离心除去固定液,PBS洗2次。抗caspase3抗体的标记采用间接荧光免疫法。将上述制备好的单细胞悬液用PBS洗2次,分别用加入1∶200稀释的特异性抗体50 μl,37℃水浴30 min,离心弃上清,加人1∶200稀释的FIFCIgG 100 μl,37℃水浴30 min,离心弃上清,PBS洗1次以去除未结合的荧光抗体。上机前加人1 ml PBS,400目筛网过滤,上机分析。caspase3蛋白表达量以平均荧光强度表示。

  1.8 统计学方法

  计量资料描述采用x±s表示,用SPSS12.0对数据进行统计学处理。

  2 结 果

  2.1 TUNEL染色结果

  TUNEL染色显示凋亡的细胞核内有分布均匀的深蓝色颗粒,体积等于或小于正常胞核,凋亡细胞呈孤立、散在分布。再灌注后细胞凋亡数明显增加。对照组细胞凋亡数为(4.06±1.20)/视野,模型组为(72.80±25.20)/视野,两组间差异有统计学意义(P<0.01)。表明缺血再灌注可使神经细胞凋亡显著增加。GFP siRNA组为(69.10±20.24)/视野,与模型组相比,无显著差异。caspase3 siRNA组细胞凋亡数为 (29.15±9.10)/视野,较模型组的神经细胞凋亡数明显减少(P<0.01),提示抑制caspase3可明显抑制6羟基多巴胺所致的神经细胞凋亡。

  2.2 各组细胞凋亡率

  对照组的细胞凋亡率为(5.00±1.00)%,模型组为(65.36±10.10)%,caspase3 siRNA组为(19.00±4.08)%,GFP siRNA组为(49.80±8.60)%。caspase3 siRNA组与对照组、GFP siRNA 组的细胞凋亡指数相比有统计学意义(P<0.01)。而GFP siRNA组和对照组细胞凋亡指数相比无统计学意义。

  2.3 各组caspase3阳性率

  模型组的caspase3阳性率〔(30.15±7.02)%〕明显高于对照组〔(8.20±2.45)%〕,差异有统计学意义(P<0.01)。GFP siRNA 组caspase3阳性率〔(32.35±5.00)%〕明显高于对照组,差异有统计学意义(P<0.01),与模型组相比,差异无显著性。caspase3 siRNA组caspase3阳性率〔(12.00±2.90)%〕明显低于模型组、GFP siRNA组,差异有统计学意义(P<0.01)。

  3 讨 论

  Fire等〔3〕首先在秀丽新小杆线虫中描述了RNA干扰,即与mRNA编码区同源的双链RNAi(double stranded RNA,dsRNA)诱导mRNA发生降解而引起的转录后水平基因沉默。外源性dsRNA进入细胞后产生的小分子干扰RNAi(small interfering RNA,siRNA)与多种核酸酶形成了沉默复合物 (RNAinduced silencing complex,RISC),RISC结合和切割mRNA介导RNA干扰的过程。RNAi具有高度的序列特异性和高效性〔4〕,是一种高度进化得以保存的机制,出现在多种真核细胞如:酵母、无脊椎动物、植物和脊椎动物〔5〕。

  细胞凋亡信号通道是一个复杂的网络系统,受多种细胞内外因素的调节,细胞内的各种caspase酶原激活反应也都参与凋亡信号的调节,其中caspase3起着调往执行者的作用,其大量表达预示着细胞凋亡即将发生。对于凋亡信号通路可以用不同的方式、在几个关键部位被有效地抑制。利用RNAi技术,使凋亡信号通路上的蛋白质基因在转录后水平沉默,是人为实现调节凋亡信号最有效的策略之一。目前,已有文献报道在体内和体外研究调节细胞凋亡过程中,针对凋亡通路成员如:caspase3〔6〕,caspase8〔7〕或Fas〔8,9〕等的siRNA发挥了有效作用。

  本实验用RNAi技术对caspase3基因表达进行抑制,从而对caspase3介导的凋亡信号通路进行抑制,最终明显地抑制了细胞凋亡。本实验中模型组细胞凋亡率明显高于对照组,且caspase3阳性率明显高于对照组,caspase3 siRNA组细胞凋亡数及细胞凋亡率明显低于模型组,caspase3阳性率也明显低于模型组。而GFP siRNA组样本各项参数与模型组相比均无明显差异。提示针对caspase3的RNAi技术可有效地抑制caspase3的表达及凋亡通路的激活、降低caspase3的水平,从而降低细胞凋亡率。

  总之,针对caspase3基因的RNAi技术可有效地抑制帕金森病细胞模型凋亡因子的表达,从而保护神经细胞免于凋亡。

参考文献


  1 Chen M,Wang J.Initiator caspases in apoptosis signaling pathways〔J〕. Apoptosis,2002;7(4):3139.

  2 White E.Life,death,and the pursuit of apoptosis〔J〕.Gene Dev,1996;10(1):115.

  3 Fire A,Xu S,Montgomery MK,et al.Potent and specific genetic interference by double stranded RNA in Caenorhabditis elegans〔J〕.Nature,1998;391(6669):80611.

  4 Thakur A.RNA interference revolution〔J〕.Mol Biol Genet,2003;6(1):3949.

  5 Hannon GJ.RNA interference〔J〕.Nature,2002;418:24451.

  6 Wurzer WJ,Planz O,Ehrhardt C,et al.Caspase3 activation is essential for efficient influencenza virus propagation〔J〕.EMBO J,2003;22(11):271728.

  7 Zender L,Hutker S,Liedtke C,et al.Caspase 8 small interfering RNA prevents acute liver failure in mice〔J〕.Proc Natl Acad Sci USA,2003;100:7797802.

  8 Song E,Lee SK,Wang J,et al.RNA interference targeting Fas protects mice from fulminant hepatitis〔J〕.Nat Med,2003;9:34751.

  9 Wang J,Li W,Min J,et al.Fas siRNA reduces apoptotic cell death of allogeneictransplanted hepatocytes in mouse spleen〔J〕.Transplant Proc,2003;35(4):15945.

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