作者:黄国民 林瑞新 房学东 刘斌
【摘要】 目的 观察环氧合酶2(COX2)对人胃癌裸鼠移植瘤的影响并探讨其机制。方法 构建靶向COX2表达质粒和在BALB/c裸鼠皮下建立SGC7901人胃癌细胞动物模型,用COX2表达质粒基因转染治疗。结果 构建的COX2表达质粒在体内、外均可稳定表达。COX2基因治疗可抑制裸鼠皮下肿瘤的生长和淋巴管的生成。COX2基因转染下调血管内皮生长因子C(VEGFC)的表达。结论 通过构建靶向COX2 siRNA真核表达载体可抑制人胃癌裸鼠移植瘤的生长和淋巴管生成,COX2对抑制胃癌细胞(SGC7901)治疗有确切效果。
【关键词】 胃肿瘤;环氧合酶2;基因治疗
目前对于胃癌的治疗效果仍不理想,作为中晚胃癌主要治疗手段的化疗和放疗,在杀灭肿瘤细胞的同时,也损伤正常的组织细胞,疗效低、毒副作用大。有研究表明环氧合酶2(COX2)在多种肿瘤中呈高表达,并可能在肿瘤的发生、发展过程中起到重要的作用〔1,2〕。但由于COX2抑制剂尚存在特异性和抑制效率等方面的不足,因此需要研究如何提高COX2治疗的敏感性。本研究希望通过构建表达靶向COX2的短发夹状双链RNA(shRNA)的表达质粒,转染人胃癌细胞系SGC7901,探讨其抑制肿瘤细胞生长的机制及对淋巴管生成的影响。
1 材料与方法
1.1 动物及试剂
BALB/c裸鼠,4 w龄,雄性,由上海斯莱克实验动物有限责任公司提供。置于SPF级无菌饲养室,恒温,恒湿,半屏障系统下饲养。中分化人胃癌细胞系SGC7901购于中科院上海生物研究所,COX2羊抗人多克隆一抗购于Santa Cruz公司,羊抗人血管内皮生长因子(VEGF)C单克隆抗体、血管内皮生长因子受体(VEGFR)3单克隆抗体购于武汉博士德生物技术开发公司,GENE GENIUS凝胶图像分析仪购于英国Syngene公司。
1.2 COX2表达载体的构建
全长小鼠COX2的cDNA来自COX2质粒,被克隆至pGenesil1构建COX2表达载体(pGenesil1COX2)。DNA序列分析证实基因序列嵌入适当的读码框内,无突变。由上海博亚生物技术有限公司合成。
1.3 RTPCR检测SGC7901细胞COX2 mRNA表达
根据GenBank公布的COX2 cDNA序列,利用primer 5软件设计引物。以βactin为内参照。由上海博亚生物技术有限公司合成。COX2引物:上游:5′TCAAGTCCCTGAGCATCIAC3′,下游:5′CATTCCTACCACCAGCAACC3′。目的片段长度488 bp。βactin引物:上游:5′GAAACTACCTTCAACTCCATC3′,下游:5′CGAGGCCAGGATGGAGCCGCC3′,目的片段长度219 bP。PCR产物行2%琼脂糖凝胶电泳嗅化乙锭染色,紫外灯下检查,计算机扫描电泳图像,测出各条带的灰度值。
1.4 动物模型及分组
实验动物分为3组,每组5只,分别为:接种pGenesil1COX2siRNA质粒组、接种pGenesil1cotrolsiRNA质粒对照组、接种SGC7901组。计数为1×107的细胞接种于裸鼠右前肢腋下,3组细胞接种裸鼠后第4天可见肿瘤长出,每隔4 d测量1次裸鼠最长径a值和最短径b值,4 w后处死,计算肿瘤体积,公式为:肿瘤体积(V)=1/2×最大直径×最小直径2。肿瘤体积抑制率=(1-干预组肿瘤体积/空白对照组肿瘤体积)×100%。共测量7次。
1.5 裸鼠肿瘤组织免疫组化染色判断标准
COX2、VEGFC阳性细胞为细胞质染色呈棕或棕褐黄色,计算每例切片5个高倍视野中阳性染色反应细胞的百分率,<10%判定为阴性(-),>10%判定为阳性(+)。VEGFR3染色呈棕黄色的单个内皮细胞或内皮细胞簇均计为1个微淋巴管(MLV),每例首先在低倍镜下选择微淋巴管密度(MLVD)最高的肿瘤区域,在200倍光镜下,随机计数5个视野内MLV,再求其平均值。通过MLV计数反映VEGFR3水平。
1.6 RTPCR检测肿瘤组织COX2 mRNA水平
采用Invitrogen公司的Trizol试剂提取肿瘤组织的总RNA,Toyobo公司的RTPCR一步法试剂盒。COX2引物,上游:5′GTCAAAACCGAGGTGTATGT3′;下游:5′AAGTTGGTGGACTGTCAATC3′;扩增产物长度为270 bp。扩增产物1%琼脂糖凝胶电泳30 min,EB染色,用BIORAD分析仪上观察并记录结果。
1.7 统计学处理
所有实验数据取x±s,采用单向方差分析(0neWay ANONA)。采用SPSS13.0软件进行处理。
2 结 果
2.1 肿瘤体积及体积抑制率
干扰组、SGC7901组、阴性对照组肿瘤体积依次为(3.11±0.53、6.58±2.01、6.76±1.98)cm3,干扰组与SGC7901组、阴性对照组之间有显著性差异(P<0.05);SGC7901组与阴性对照组之间无显著性差异(P>0.05),干扰组肿瘤体积抑制率为55%,干扰组对肿瘤生长明显抑制(P<0.05)。
2.2 基因转染COX2在SGC7901成瘤组织中的表达
COX2蛋白主要为细胞浆表达,阳性染色主要为细胞浆呈棕褐色。SGC7901组镜下约70%~80%的面积为阳性染色。阴性对照组也表现为强阳性,而干扰组COX2蛋白为弱阳性表达。
2.3 基因转染COX2抑制VEGFC基因表达减少,SGC7901成瘤组织中淋巴管的减少
光镜下可见肿瘤组织中的MLV呈棕色,为单个或成簇的细胞,可有或无管腔。MLV大多集中在肿瘤边缘,肿瘤中心MLVD较肿瘤边缘相对减少。干扰组MLVD为8.42±3.3,对照组为18.34±7.1,SGC7901组为19.1±6.0,转染了干扰载体的肿瘤和未转染组之间有显著性差异(P<0.05)。
2.4 半定量RTPCR检测COX2 mRNA表达
以琼脂糖电泳条带的亮度判断COX2 mRNA表达高低。实验结果显示,与生理盐水处理组COX2 mRNA表达相比,pGenesil1cotrolsiRNA 处理组COX2 mRNA几乎无改变,而pGenesil1COX2siRNA质粒处理组COX2 mRNA表达明显下调,经软件分析,mRNA下调72.15%。
3 讨 论
淋巴转移是胃癌最主要的转移途径,早期胃癌即可出现淋巴转移,进展期胃癌淋巴转移高达70%以上,是影响手术效果及预后的一个主要因素。由于缺乏明确的淋巴管生成因子和标记因子,且过去一直强调血管生成在肿瘤转移中的重要性,使得淋巴转移的研究进展缓慢,至今胃癌淋巴道转移的机制尚不清楚。有研究发现,在发生淋巴结转移的肿瘤基质中,常有淋巴管的增生和扩张,并相继发现了一些特异作用于淋巴管内皮的生长因子及受体,为研究淋巴转移开辟了新的途径。VEGFC属于血管内皮生长因子家族,又称淋巴管内皮生长因子,被认为与肿瘤、创伤等病理过程中的淋巴管生成有关。研究显示,人类多种肿瘤细胞的胞浆中都表达VEGFC,并且其表达水平与肿瘤毛细淋巴管的密度、淋巴管生成及淋巴结转移密切相关〔3~5〕。VEGFC受体之一的VEGFR3特异性地表达于淋巴管内皮细胞上,与淋巴系统的发生和发育有关,是成熟淋巴管内皮细胞的特异性标记物。VEGFC/VEGFR3调控系统可能通过介导淋巴管内皮细胞的趋化性、细胞增殖和淋巴管的增生、扩张,诱导新生淋巴管与已存淋巴管而影响淋巴管的数目、大小或改变现有淋巴管功能特性,使肿瘤细胞向淋巴管内渗透、转移,进入淋巴结,发生淋巴结转移。因此,阻断VEGFC/VEGFR3信号转导途径可能成为抗肿瘤淋巴转移的有效手段〔6,7〕。
COX2属诱导型酶,在正常组织中无表达,当细胞受到各种刺激因素作用时COX2表达迅速上调。COX2不仅是启动炎症反应的关键酶,还可以通过促进肿瘤细胞增殖、抑制凋亡、促进肿瘤新生血管形成等机制参与肿瘤的发生与发展过程。本课题组前期研究表明:COX2可能通过上调VEGFC的表达,促进胃癌的淋巴管形成和淋巴结转移,并影响胃癌患者的预后〔6,7〕。
RNA干扰技术已成为分子生物学研究中最为活跃的热点之一,并作为一种新的工具用于肿瘤的治疗研究。大量实验研究表明,利用siRNA干涉技术特异地抑制癌基因、癌相关基因或突变基因的过度表达,使这些基因保持在静寂或休眠状态,可能达到抗肿瘤作用。本研究采用皮下接种的方法将SGC7901细胞及转染质粒的干扰组和阴性对照组细胞阳性克隆接种于裸鼠皮下,成功构建了裸鼠皮下移植瘤模型,以研究COX2特异性siRNA在动物体内的抗肿瘤作用。本研究的移植瘤模型建立过程中,干扰组肿瘤小于阴性组及对照组,抑瘤率55%,统计学结果显示三组裸鼠成瘤体积有显著性差异。免疫组化结果显示:干扰组COX2、VEGFC的表达明显低于阴性对照组和SGC7901组,MLVD也明显低于其他两组,具有统计学意义。淋巴管一般位于肿瘤边缘,管腔扩张,肿瘤内部多为闭塞的管腔,推测VEGFC的过度表达增加了肿瘤内部及肿瘤边缘淋巴管的表面积,肿瘤内部为无功能的淋巴管,肿瘤周边存在有功能淋巴管,并足以使肿瘤细胞发生淋巴转移,而小分子RNA干扰抑制了肿瘤细胞VEGFC基因的表达,淋巴管生成和淋巴管密度减少,淋巴结转移的可能性减少。综上所述,本研究证明抑制COX2的表达可以抑制肿瘤的生长,COX2可以作为利用RNA干扰技术进行相关肿瘤基因治疗的靶点。同时有肿瘤淋巴管生成相关基因VEGFC表达下调,这可能为RNA干扰技术用于肿瘤防治提供新的理论依据。
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