作者:孙佰秀 刘薇 张璐 罗兵
【摘要】 目的 探讨EBV感染、ras基因突变在EBV相关胃癌(EBVaGC)发生发展中的作用。方法 应用PCRRFLP技术,分别检测13例EBVaGCs、45例与之匹配的EBV阴性胃癌(EBVnGC)以及58例相应癌旁组织中Hras 12位点,Kras 12、13位点突变情况。结果 检测到2例Hras 12位点突变,突变率为4.44%(2/58),均发生在EBVnGC组织。结论 胃癌组织 ras 基因突变率较低,ras基因突变与EBVaGC的发生无明显相关性。
【关键词】 胃肿瘤;疱疹病毒4型,人;基因,ras
[ABSTRACT]ObjectiveTo analyze the pathogenic role of EBV infection and ras mutations in the development of EBVassociated gastric carcinoma (EBVaGC).MethodsRas gene mutations were tested by PCRRFLP assay in 13 EBVaGCs, 45 EBVnegative gastric carcinomas (EBVnGC) with matched clinicopathological parameters and 58 corresponding adjacent tissues of the cancer.ResultsHras 12 codon mutation was detected in two cases of 58 gastric carcinomas (4.44%), which were in EBVnGC.ConclusionThe rate of ras gene mutations in gastric carcinomas is low. Ras gene mutation is not related with the development of EBVaGC.
[KEY WORDS]Stomach neoplasms; Herpesvirus 4, human; Genes, ras
EBV相关肿瘤的发生发展是病毒基因表达异常与癌基因、抑癌基因等异常协同作用,导致正常细胞的生长调控发生障碍所致。研究EBV感染和ras基因异常是否参与EBV相关胃癌(EBVaGC)的发生发展以及两者之间有无相关性,有助于深入探讨EBV相关胃癌的生物学特征。本文应用PCRRFLP技术分别检测EBVaGC及对照组织中Hras12位点,Kras 12、13位点突变情况,旨在探讨其在EBVaGC发生发展中的作用,现报告如下。
1 材料与方法
1.1 标本及其来源
2001年1月~2002年12月,收集青岛大学医学院附属医院126例、青岛市市立医院25例和烟台毓璜顶医院34例共185例胃癌病人手术切除的新鲜胃癌组织和相应癌旁组织(距离癌组织5 cm以上),全部病例均经病理诊断证实。本文自上述185例胃癌病人中选取经病理诊断与原位杂交证实的EBVaGC组织13例[1],男12例,女1例,平均年龄(59.8±10.2)岁(41~77岁)。肿瘤部位:胃窦部3例,胃体部8例,胃底部1例,残胃1例;组织学分型:低分化腺癌11例,中分化腺癌1例,印戒细胞癌1例。同时,选取同期临床及病理资料与之匹配的EBV阴性胃癌(EBVnGC)组织45例,男35例,女10例,平均年龄(57.9±13.4)岁(31~81岁)。两组病人年龄、性别、肿瘤部位、组织学类型、分化程度等均无显著性差异(P&>0.05)。
1.2 组织总RNA提取及cDNA合成
酚氯仿异戊醇法常规提取组织DNA,Trizol一步法提取组织总RNA。参照逆转录试剂盒要求的标准条件进行cDNA合成。反应体系为:10×buffer 2 μL,MgCl2 5 mmol/L,dNTP 1 mmol/L,AMV反转录酶15 U,核酸酶抑制剂0.5 U,Oligo(dT)15 0.5 μg,模板RNA 5 μL,加NucleaseFree Water 至终体积20 μL。42 ℃ 1 h,99 ℃ 5 min,然后快速冷却至4 ℃。合成的cDNA用作PCR反应模板,-20 ℃保存备用。
1.3 ras基因突变检测
1.3.1 引物合成
参照文献[2,3]设计并由上海生工生物工程技术服务有限公司合成检测ras基因突变的特异性引物,同时选择相应的限制性核酸内切酶进行酶切分析,引物序列、扩增产物大小以及所用限制性内切酶见表1。
1.3.2 Hras 12位点,Kras 12、13位点扩增
PCR反应体系为:10×buffer 2.5 μL,MgCl2 1.5 mmol/L,dNTP 0.2 mmol/L,上下游引物各0.5 μmol/L,Taq DNA聚合酶1.0 U,DNA模板2 μL,加双蒸水至终体积25 μL。检测Kras 12位点突变的 PCR扩增参数为:95 ℃预变性5 min;95 ℃ 40 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,共35个循环;最后72 ℃延伸5 min。检测Kras 13位点突变的扩增参数中退火温度调整为50 ℃, 其余参数均与检测Kras 12位点突变相同。检测Hras 12位点突变的PCR扩增参数为:94 ℃预变性5 min;然后,94 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,35个循环;最后72 ℃延伸5 min。取PCR扩增产物5 μL于含溴化乙锭(0.5 mg/L)的20 g/L琼脂糖凝胶中电泳(80 V,1 h),紫外线投射仪下观察结果,并与PCR Marker DL2000进行对照分析,若分别观察到162、159和170 bp条带表明扩增成功。
1.3.3 限制性酶切反应
检测Kras 12位点突变的限制性酶切反应体系为:10×NEB buffer 2 μL,100×BSA 0.2 μL,BstNⅠ5 U,PCR产物10 μL,最后加双蒸水至20 μL,混匀后60 ℃水浴过夜。检测Kras 13位点突变的限制性酶切反应体系为:10× buffer 2 μL,HaeⅢ 5 U,PCR产物5 μL,最后加双蒸水至20 μL,混匀后37 ℃水浴过夜。检测 Hras 12位点突变的限制性酶切反应体系为:10× buffer2 μL,HpaⅡ 10 U,PCR产物5 μL,加入双蒸水至20 μL,混匀后37 ℃水浴1 h。酶切产物于80 g/L聚丙烯酰胺凝胶中电泳,溴化乙锭染色,紫外线投射仪下观察结果并拍照。野生型和突变型条带结果判断标准见表1。表1 PCRRFLP检测所用寡聚核苷酸引物和限制性核酸内切酶名称引物序列(略)
2 结 果
本文2例病人检测到Hras 12位点突变,突变率4.44%(2/58),均发生在EBVnGC(图1~3)。Kras 12位点PCR产物大小为162 bp,野生型酶切产物大小为133、29 bp; Kras 13位点PCR产物大小为162 bp,野生型酶切产物大小分别为85、48及26 bp; Hras 12位点PCR产物大小为170 bp,野生型酶切产物大小为66、56及48 bp,突变型酶切产物大小为122、48 bp。
3 讨论
EBV是疱疹病毒科γ亚科的淋巴滤泡病毒,大量血清学研究表明,EBV感染十分广泛,几乎遍及世界各地,成年人的感染率可达98%。EBV具有B淋巴细胞嗜性,能够在B淋巴细胞中建立潜伏感染,并可刺激细胞增生和转化。EBV引起的人类疾病主要包括传染性单核细胞增多症、伯基特淋巴瘤,并与多种恶性肿瘤的发生密切相关。1993年,TOKUNAGA等[4]将经EBER1 ISH证实存在EBV的胃癌细胞定义为EBVaGC。
ras基因家族包括Haras、Kiras和Nras,编码产物Ras蛋白有两种结合形式:一种为与GTP结合的活性形式;另一种为与GDP结合的非活性形式。Ras蛋白两种形式的转换可调节细胞生理功能并参与信号传导。在正常细胞中,Ras蛋白可以通过自身GTPase活性从GTP结合的活性形式变为GDP结合的非活性形式;但在肿瘤细胞中, ras基因异常可以干扰GTPase活性,Ras蛋白始终为与GTP结合的活性形式,连续的生长信号刺激可导致细胞恶性增生进而癌变。ras癌基因异常导致肿瘤发生的主要方式为点突变,研究表明,约10%~15%的肿瘤中至少有1种ras基因发生点突变,点突变主要集中在第12、13以及61位点,这些致瘤性点突变降低了Ras蛋白水解GTP为GDP的能力,从而使与GTP结合的活性形式的Ras半衰期延长,持续促进细胞生长。
YOO等[5]采用PCR技术和DNA序列检测,分析了140例美国胃腺癌病人癌组织中ras基因突变情况,结果显示,ras基因点突变率为14%,5例Hras 12位点突变,7例Kras 13位点突变,3例Kras 61位点突变;未发现Hras 13、61及Kras 12位点突变。经统计学分析显示,ras基因点突变与病人年龄、性别、肿瘤位置、肿瘤大小、组织分化程度以及预后无明显相关性;且不同地区和种族人群ras基因突变无明显差异。
本文13例EBVaGC组织均未检测到ras基因突变,推测EBV感染与ras基因突变在EBVaGC发生中无相关性。EBV感染可能通过其他机制影响细胞的增殖,全面检测其他细胞增殖和凋亡相关基因的表达,将有助于探讨EBVaGC的生物学特征[8]。
综上所述,ras基因突变在胃癌的发生中不起主要作用,与EBVaGC的发生无明显相关性。
参考文献
[1]LUO B, WANG Y, WANG X F, et al. Expression of EpsteinBarr virus genes in EBVassociated gastric carcinomas[J]. World J Gastroentrology, 2005,11:617770.
[2]HATZAKI A, RAZI E, ANAGNOSTOPOULOU K, et al. A modified mutagenic PCRRFLP method for Kras codon 12 and 13 mutations detection in NSCLC patients[J]. Mol Cell Probes, 2001,15:243247.
[3]罗元辉,房殿春,鲁荣,等. 采用PCRRFLP技术分析石蜡包埋胃癌组织ras和p53基因点突变[J]. 肿瘤防治研究, 1995,22:6871.
[4]TOKUNAGA M, LAND C E, UEMURA Y, et al. EpsteinBarr virus in gastric carcimona[J]. Am J Pothol, 1993,143(5):12501254.
[5]YOO J Y, PARK S Y, ROBINSON, et al. Ras gene mutations and expression of ras signal transduction mediators in gastric adenocarcinomas[J]. Arch Pathol Lab Med, 2002,126(9):10961100.
[6]郝莹,张锦坤,吕有勇,等. 应用多种方法检测胃癌演变过程中ras基因的突变[J]. 中华内科杂志, 1997,36(9):595598.
[7]顾华丽,董静. 胃癌组织中Hras及Kras基因第12密码子点突变的检测及意义[J]. 青岛大学医学院学报, 2006,42(1):5660.
[8]阎丽萍,罗兵,王笑峰,等.EBV相关胃癌组织中bcl2和Ki67蛋白表达的检测[J]. 青岛大学医学院学报, 2004,40(1):5759.